Wir lösen stöchiometrisches AgCl in einer Ammoniaklösung (T = 25 °C). Wir gehen davon aus, dass die Gesamtsilberkonzentration der Lösung nach der Auflösung 0,01 M beträgt. Wie hoch ist die Konzentration der Ammoniaklösung? Ks für AgCl ist 1,56x10^-10, β1 = 2,1x10^3, β2 = 1,7x10^7.
(A) 0,194 M
(B) 0,201 M
(C) 0,223 M
(D) 0,214 M

Wir lösen die stochiometrische AgCL in einer Ammoniaklösung (T = 25 °C) auf. Wir gehen davon aus, dass nach der Auflösung die Gesamtsilberkonzentration der Lösung 0,01 M betragen wird. Wie hoch ist die Konzentration der Ammoniaklösung? Ks für AgCl ist 1,56x10^-10, β1 = 2,1x10^3, β2 = 1,7x10^7.
(A) 0,194 M
(B) 0,201 M
(C) 0,223 M
(D) 0,214 M


Die Verbindung A zeigt im Protonen-NMR zwei Signale, ein Triplett bei 0,9 ppm für 6H und ein Quartett bei 1,3 ppm für 4H. Durch Monobromierung entsteht die Verbindung B. B reagiert mit alkoholischem KOH zu C, das zwei geometrische Isomere aufweist. Das cis-Isomer von C reagiert mit (1E,3E)-Penta-1,3-dien-1-ol unter Bildung von Verbindung D. Identifizieren Sie Verbindung D.
(A) (1S,4R)-4,6,6-Trimethylcyclohex-2-enol
(B) (1S,4S)-4,6,6-Trimethylcyclohex-2-enol
(C) (1S,4R,5S,6R)-4,5,6-Trimethylcyclohex-2-enol
(D) (1S,4R,5S,6S)-4,5,6-Trimethylcyclohex-2-enol

Verbindung A zeigt zwei Signale im Protonen-NMR, ein Triplett bei 0,9 ppm für 6H und ein Quartett bei 1,3 ppm für 4H. Sie unterliegt einer Monobromierung zu Verbindung B. B reagiert mit alkoholischer KOH zu C, das zwei geometrische Isomere aufweist. Das cis-Isomer von C reagiert mit (1E,3E)-Penta-1,3-dien-1-ol zu Verbindung D. Identifizieren Sie Verbindung D.
(A) (1S,4R)-4,6,6-Trimethylcyclohex-2-enol
(B) (1S,4S)-4,6,6-Trimethylcyclohex-2-enol
(C) (1S,4R,5S,6R)-4,5,6-Trimethylcyclohex-2-enol
(D) (1S,4R,5S,6S)-4,5,6-Trimethylcyclohex-2-enol

Verbindung A zeigt zwei Signale im Protonen-NMR, ein Triplett bei 0,9 ppm für 6H und ein Quartett bei 1,3 ppm für 4H. Es unterliegt einer Monobromierung zu Verbindung B. B reagiert mit alkoholischer KOH zu C, das zwei geometrische Isomere aufweist. Das cis-Isomer von C reagiert mit (1E,3E)-Penta-1,3-dien-1-ol zu Verbindung D. Identifizieren Sie Verbindung D.
(A) (1S,4R)-4,6,6-Trimethylcyclohex-2-enol
(B) (1S,4S)-4,6,6-Trimethylcyclohex-2-enol
(C) (1S,4R,5S,6R)-4,5,6-Trimethylcyclohex-2-enol
(D) (1S,4R,5S,6S)-4,5,6-Trimethylcyclohex-2-enol


Sie möchten die Hochregulierung eines Transkripts aus den hypertrophen Muskeln der Maus quantifizieren und mit Hilfe einer quantitativen Polymerase-Kettenreaktion mit den Werten des Wildtyps vergleichen. Sie isolieren die Gewebe und bereiten die RNA sorgfältig für die cDNA-Synthese vor. Sie führen die qPCR in einem zweistufigen Verfahren durch. Für den zweiten Schritt müssen Sie ein Primerpaar entwerfen, das den spezifischen Nachweis des fraglichen Transkripts ermöglichen würde. Sie haben die genomische Sequenz des Transkripts mit einer Länge von 23,7 kb identifiziert. Das ATG liegt bei 6867 bp, gefolgt von einer 128 bp langen 5'UTR, die sich über ein Intron erstreckt. Das zweite Exon endet bei 8272 bp. Es gibt drei weitere Exons; das letzte Exon enthält den Stop bei 23276 bp und ist etwa 500 bp lang. Zwischen dem zweiten und dem dritten Exon befindet sich das größte Intron des Gens mit einer Länge von 7367 bp. Das dritte ist das größte Exon mit einer Länge von 2126 bp.
Wie positionieren Sie Ihr Primerpaar unter Berücksichtigung ihrer Länge von 20 bp und einer geeigneten Annealing-Temperatur für eine optimale Transkriptquantifizierung?
(A) vorwärts ca. 1 bp und rückwärts ca. 6900 bp auf der genomischen DNA
(B) vorwärts ca. 6900 bp und rückwärts ca. 8200 bp auf der genomischen DNA
(C) vorwärts ca. 16100 bp und rückwärts ca. 23200 bp auf der genomischen DNA
(D) vorwärts um 8200 bp und rückwärts um 16100 bp auf der genomischen DNA

Sie möchten die Hochregulierung eines Transkripts aus den hypertrophen Muskeln der Maus quantifizieren und mithilfe einer quantitativen Polymerase-Kettenreaktion mit den Werten im Wildtyp vergleichen. Sie isolieren die Gewebe und bereiten die RNA sorgfältig für die cDNA-Synthese vor. Sie führen die qPCR in einem zweistufigen Prozess durch. Für den zweiten Schritt müssen Sie ein Primerpaar entwickeln, das die spezifische Erkennung des betreffenden Transkripts ermöglicht. Sie haben die 23,7 kb lange Genomsequenz des Transkripts identifiziert. Das ATG liegt bei 6867 bp, gefolgt von einem 128 bp langen 5'UTR, das sich über ein Intron erstreckt. Das zweite Exon endet bei 8272 bp. Es gibt drei weitere Exons; das letzte Exon enthält den Stopp bei 23276 bp und ist etwa 500 bp lang. Zwischen dem zweiten und dem dritten befindet sich das längste Intron des Gens mit 7367 bp Länge. Das dritte ist das längste Exon mit 2126 bp Länge.
Wie positionieren Sie Ihr Primerpaar für eine optimale Transkriptquantifizierung, wenn Sie ihre Länge von 20 bp und eine geeignete Annealing-Temperatur berücksichtigen?
(A) vorwärts etwa 1 bp und rückwärts etwa 6900 bp auf der genomischen DNA
(B) vorwärts etwa 6900 bp und rückwärts etwa 8200 bp auf der genomischen DNA
(C) vorwärts etwa 16100 bp und rückwärts etwa 23200 bp auf der genomischen DNA
(D) vorwärts etwa 8200 bp und rückwärts etwa 16100 bp auf der genomischen DNA

Sie möchten die Hochregulierung eines Transkripts aus den hypertrophen Muskeln der Maus quantifizieren und sie mithilfe einer quantitativen Polymerasekettenreaktion mit den Werten im Wildtyp vergleichen. Sie isolieren die Gewebe und bereiten die RNA sorgfältig für die cDNA-Synthese vor. Sie führen die qPCR in einem zweistufigen Prozess durch. Im zweiten Schritt müssen Sie ein Primerpaar entwerfen, das den spezifischen Nachweis des betreffenden Transkripts ermöglicht. Sie haben die Genomsequenz des Transkripts identifiziert, die 23,7 kb lang ist. Das ATG liegt bei 6867 bp und folgt einem 128 bp langen 5'UTR, der sich über ein Intron erstreckt. Das zweite Exon endet bei 8272 bp. Es gibt drei weitere Exons; Das letzte Exon enthält den Stopp bei 23276 bp und ist etwa 500 bp lang. Zwischen dem zweiten und dritten befindet sich das größte Intron des Gens mit einer Länge von 7367 bp. Das dritte ist das größte Exon mit einer Länge von 2126 bp.
Wie positionieren Sie Ihr Primerpaar angesichts der Länge von 20 bp und einer geeigneten Annealing-Temperatur für eine optimale Transkriptquantifizierung?
(A) vorwärts um etwa 1 bp und rückwärts um etwa 6900 bp auf der genomischen DNA
(B) vorwärts um etwa 6900 bp und rückwärts um etwa 8200 bp auf der genomischen DNA
(C) vorwärts um etwa 16100 bp und rückwärts um etwa 23200 bp auf der genomischen DNA
(D) vorwärts um etwa 8200 bp und rückwärts um etwa 16100 bp auf der genomischen DNA


Ein Wissenschaftler möchte die Wirkung einer Mutation M in einem Gen X in Saccharomyces cerevisiae testen. Er platziert eine Kopie des ursprünglichen Gens X auf einem Plasmid mit einem Marker Y. Anschließend ersetzt er X im Genom durch die mutierte Version mithilfe eines anderen Markers Z. Danach wächst der Stamm in Anwesenheit von A und in Abwesenheit von Z, um die Kopie auf dem Plasmid zu entfernen. Der Stamm wächst jedoch nicht.
Was können Sie über M, Y, Z und A sagen?
(A) Neutral, 5'-FOA, URA3, LEU2
(B) Tödlich, LEU2, 5'-FOA, URA3
(C) Neutral, URA3,5'-FOA, LEU2
(D) Tödlich, URA3, LEU2, 5'-FOA

Ein Wissenschaftler möchte die Wirkung einer Mutation M in einem Gen X in Saccharomyces cerevisiae testen. Er platziert eine Kopie des ursprünglichen Gens X auf einem Plasmid mit einem Marker Y. Dann ersetzt er X im Genom durch die mutierte Version mit einem anderen Marker Z. Dann züchtet er den Stamm in Anwesenheit von A und in Abwesenheit von Z, um die Kopie auf dem Plasmid zu entfernen. Der Stamm wächst nicht.
Was können Sie über M, Y, Z und A sagen?
(A) Neutral, 5'-FOA, URA3, LEU2
(B) Letal, LEU2, 5'-FOA, URA3
(C) Neutral, URA3, 5'-FOA, LEU2
(D) Letal, URA3, LEU2, 5'-FOA


Verbindungen, die die gleiche Molekülformel haben, sich aber in ihrer Strukturanordnung unterscheiden, werden als Isomere bezeichnet. Es gibt zwei Arten von Isomeren: Konstitutionsisomere und Stereoisomere. Konstitutionsisomere haben die gleiche Molekülformel, unterscheiden sich aber in ihrer Struktur. Bei Stereoisomeren sind die Moleküle auf die gleiche Weise verbunden, aber ihre räumliche Anordnung ist unterschiedlich.
Welche der folgenden organischen Einheiten weisen optische Isomerie auf?

1. Dimethyl-6,6'-dinitro-[1,1'-biphenyl]-2,2'-dicarboxylat
2. Methyl-2-hydroxypropanoat
3. Benzophenon
4. Dimethylfumarat
(A) 1, 2 und 4
(B) 3 und 4
(C) 2 und 3
(D) 1 und 2

Verbindungen, die die gleiche Molekülformel haben, sich aber in ihrer Strukturanordnung unterscheiden, werden als Isomere bezeichnet. Es gibt zwei Arten von Isomeren: Konstitutionsisomere und Stereoisomere. Konstitutionsisomere haben die gleiche Molekülformel, unterscheiden sich aber in ihrer Struktur. Bei Stereoisomeren sind die Moleküle auf die gleiche Weise verbunden, aber ihre räumliche Anordnung ist unterschiedlich.
Welche der folgenden organischen Einheiten weisen optische Isomerie auf?

1. dimethyl-6,6'-dinitro-[1,1'-biphenyl]-2,2'-dicarboxylat
2. methyl-2-hydroxypropanoat
3. benzophenon
4. dimethyl fumarat
(A) 1, 2 und 4
(B) 3 und 4
(C) 2 und 3
(D) 1 und 2

Verbindungen, die die gleiche Summenformel haben, sich aber in ihrer strukturellen Anordnung unterscheiden, werden als Isomere bezeichnet. Es gibt zwei Arten von Isomeren: Konstitutionsisomere und Stereoisomere. Konstitutionsisomere haben die gleiche Summenformel, unterscheiden sich jedoch in ihrer Struktur. Bei Stereoisomeren sind Moleküle auf die gleiche Weise verbunden, ihre Anordnung im Raum ist jedoch unterschiedlich.
Welche der folgenden organischen Einheiten zeigen optische Isomerie?

1. Dimethyl-6,6'-dinitro-[1,1'-biphenyl]-2,2'-dicarboxylat
2. Methyl-2-hydroxypropanoat
3. Benzophenon
4. Dimethylfumarat
(A) 1, 2 und 4
(B) 3 und 4
(C) 2 und 3
(D) 1 und 2


Welcher der folgenden beobachteten Effekte liefert keinen Beweis für die zusammengesetzte Struktur von Hadronen?
(A) Streuung von Elektronen an Nukleonen
(B) Spektren exotischer Mesonen wie Charmonium
(C) „Oktett“-Symmetrien zwischen Baryonenquantenzahlen
(D) Die Bindungsenergie des Deuterons

Welche der folgenden beobachteten Effekte liefert keine Beweise für die zusammengesetzte Struktur von Hadronen?
(A) Streuung von Elektronen an Nukleonen
(B) Spektren exotischer Mesonen wie Charmmonium
(C) "Oktett" -Symmetrien zwischen Baryonquantenzahlen
(D) die Bindungsenergie des Deutrons

Welcher der folgenden beobachteten Effekte liefert keinen Beweis für die zusammengesetzte Struktur von Hadronen?
(A) Streuung von Elektronen an nukleonen
(B) Spektren exotischer Mesonen wie charmonium
(C) „Oktett“-Symmetrien zwischen baryonenquantenzahlen
(D) Die Bindungsenergie des deuterons


Was ist das Hauptergebnis der Reaktion zwischen 4,4-Dimethylcyclopent-1-enol und Brom?
(A) 4-Brom-4,4-dimethylcyclopentanon
(B) (1R,2S)-1,2-Dibrom-4,4-dimethylcyclopentanol
(C) (1R,2R)-1,2-Dibrom-4,4-dimethylcyclopentanol
(D) 2-Brom-4,4-dimethylcyclopentanon


Identifizieren Sie Produkt D in der folgenden Reaktionsreihe.
5-Brom-3a,4a-dimethyldecahydrocyclopenta[1,4]cyclobuta[1,2]benzol + H2O ---> A
A + PDC ---> B
B + H2CPPh3 ---> C
C + TsOH ---> D
(A) 3a,5,5-Trimethyl-1,2,3,3a,5,6,7,8-octahydrocyclopentacyclobutabenzol
(B) 3a,5-Dimethyldecahydrocyclopentacyclobutabenzol
(C) 3a,4a,5,5-Tetramethyl-2,3,3a,4,4a,5-hexahydro-1H-cyclobutadiannulen
(D) 3a,4,5a-Trimethyl-1,2,3,3a,5a,6,7,8-octahydrocyclopentapentalen


Drei Spins S1, S2 und S3 in einem isolierten zweidimensionalen Edwards-Anderson-System bilden ein Dreiecksgitter. Die Spins können Werte von ±1/2 annehmen. Die drei Kopplungskonstanten sind -1, -1 und 1. Wie hoch ist die maximal mögliche Energie dieses Systems, wenn man nur Wechselwirkungen mit den nächsten Nachbarn annimmt?
(A) 1/2
(B) -1/4
(C) -1/2
(D) 1/4

Drei Spins S1, S2 und S3 in einem isolierten zweidimensionalen Edwards Anderson-System bilden ein dreieckiges Gitter. Die Spins können Werte von ±1/2 annehmen. Die drei Kopplungskonstanten sind -1, -1 und 1. Wie hoch ist die maximal mögliche Energie dieses Systems, wenn nur Wechselwirkungen mit dem nächsten Nachbarn angenommen werden?
(A) 1/2
(B) -1/4
(C) -1/2
(D) 1/4


3-(Hydroxymethyl)-5-(prop-1-en-2-yl)cyclohexan-1-on wird mit Natriumhydrid und anschließend mit Benzylbromid behandelt, wodurch Produkt 1 entsteht.

1 wird in Gegenwart einer katalytischen Menge HCl mit p-Toluolsulfonylhydrazid behandelt, wodurch Produkt 2 entsteht.

2 wird bei niedriger Temperatur mit n-Butyllithium und anschließend mit wässrigem Ammoniumchlorid behandelt, wodurch Produkt 3 entsteht.

3 wird unter einer Wasserstoffatmosphäre mit Pd/C gerührt, wodurch Produkt 4 entsteht.

Wie ist die Struktur von Produkt 4?
(A) (((3-Isopropylcyclohexyl)methoxy)methyl)benzol
(B) 3-((Benzyloxy)methyl)-1-butyl-5-isopropylcyclohexan-1-ol
(C) N'-(3-(Hydroxymethyl)-5-isopropylcyclohexyl)-4-methylbenzolsulfonhydrazid
(D) (3-Isopropylcyclohexyl)methanol

3- (Hydroxymethyl) -5- (prop-1-en-2-yl) cyclohexan-1-one wird mit Natriumhydrid behandelt, gefolgt von Benzylbromid, Produkt 1 bildet.

1 wird mit p-toluenesulfonylhydrazid in Gegenwart einer katalytischen Menge an HCl Produkt 2 bildet.

2 wird bei niedriger Temperatur mit N-Butyllithium behandelt, gefolgt von wässrigem Ammoniumchlorid, Produkt 3 bildet.

3 wird mit Pd/C unter einer Wasserstoffatmosphäre gerührt, wodurch Produkt 4 entsteht.

Was ist die Struktur von Produkt 4?
(A) (((3-Isopropylcyclohexyl)methoxy)methyl)benzol
(B) 3-((Benzyloxy) methyl) -1-butyl-5-isopropylcyclohexan-1-ol
(C) N '-(3- (Hydroxymethyl) -5-Isopropylcyclohexyl) -4-methylbenzenesulfonohydrazid
(D) (3-Isopropylcyclohexyl) methanol


Nehmen wir an, dass die Sterne gleichmäßig am Himmel verteilt sind. Wie ändert sich in diesem Szenario die Anzahl der Sterne pro Parallaxeneinheit (plx) mit plx?
(A) ~ 1/plx^1
(B) ~ 1/plx^2
(C) ~ 1/plx^3
(D) ~ 1/plx^4

Nehmen wir an, die Sterne sind gleichmäßig am Himmel verteilt. Wie ändert sich in diesem Szenario die Anzahl der Sterne pro Parallaxeneinheit (plx) mit plx?
(A) ~ 1/plx^1
(B) ~ 1/plx^2
(C) ~ 1/plx^3
(D) ~ 1/plx^4


Ein Photon h\nu breitet sich in der Oz-Richtung des Laborrahmens (R) aus. Es stößt elastisch mit einem in (R) ruhenden Teilchen m zusammen. Wir bezeichnen $\alpha=\frac{h\nu}{mc^{2}}$ und v=\beta c die Geschwindigkeit des COM-Rahmens (R') des Systems Photon-Teilchen relativ zu (R). Was ist der Ausdruck von \beta?
(A) \alpha\times\left(\frac{1}{\sqrt{1+\alpha}}\right)
(B) \alpha\times\left(\frac{1}{1-\alpha}\right)
(C) \alpha\times\left(\frac{1}{\sqrt{1-\alpha}}\right)
(D) \alpha\times\left(\frac{1}{1+\alpha}\right)

Ein Photon h\nu breitet sich in Oz-Richtung des Laborrahmens (R) aus. Es kollidiert elastisch mit einem in (R) ruhenden Teilchen m. Wir bezeichnen $\alpha=\frac{h\nu}{mc^{2}}$ und v=\beta c die Geschwindigkeit des COM-Rahmens (R') des Systems Photon-Teilchen relativ zu (R). Wie lautet der Ausdruck von \beta?
(A) \alpha\times\left(\frac{1}{\sqrt{1+\alpha}}\right)
(B) \alpha\times\left(\frac{1}{1-\alpha}\right)
(C) \alpha\times\left(\frac{1}{\sqrt{1-\alpha}}\right)
(D) \alpha\times\left(\frac{1}{1+\alpha}\right)


Wenn gesättigte Epoxide mit Organocupraten umgesetzt werden, wird die Alkylgruppe des Reagens immer am weniger gehinderten Kohlenstoff des Epoxidrings eingeführt. Bei den disubstituierten Epoxiden erfolgt die Konfigurationsumkehr an einem Kohlenstoff, an den Nu addiert ist. Identifizieren Sie das Produkt, wenn (1R,3R,4R,6S)-1,3,4-trimethyl-7-oxabicyclo [4.1.0]heptan mit Me2CuLi umgesetzt wird:
(A) (1R,4R,5R)-2,2,4,5-Tetramethylcyclohexan-1-ol
(B) (1R,2S,4R,5R)-1,2,4,5-Tetramethylcyclohexan-1-ol
(C) (1S,4R,5S)-2,2,4,5-Tetramethylcyclohexan-1-ol
(D) (1R,2R,4R,5R)-1,2,4,5-Tetramethylcyclohexan-1-ol

Wenn gesättigte Epoxide mit Organocupraten umgesetzt werden, wird die Alkylgruppe des Reagenzes immer am weniger gehinderten Kohlenstoff des Epoxidrings eingeführt. Bei den disubstituierten Epoxiden tritt eine Konfigurationsumkehr an einem Kohlenstoff auf, an den Nu addiert wird. Identifizieren Sie das Produkt, wenn (1R,3R,4R,6S)-1,3,4-Trimethyl-7-oxabicyclo [4.1.0] heptan mit Me2CuLi umgesetzt wird:
(A) (1R,4R,5R)-2,2,4,5-Tetramethylcyclohexan-1-ol
(B) (1R,2S,4R,5R)-1,2,4,5-Tetramethylcyclohexan-1-ol
(C) (1S,4R,5S)-2,2,4,5-Tetramethylcyclohexan-1-ol
(D) (1R,2R,4R,5R)-1,2,4,5-Tetramethylcyclohexan-1-ol


„Der Mikrobiologe trug eine Mischung aus Kochsalzlösung, Tris-HCl und Dinatriumethylendiamintetraessigsäure auf sterile Filterpapierscheiben auf. Die Scheiben wurden trocknen gelassen und bei 5 °C gelagert. Die Oberfläche der Lysinagarplatte wurde mit einem Rasen von Escherichia coli beimpft. Unmittelbar vor der Verwendung wurden diese Scheiben mit Kochsalzlösung rehydriert und mehrere Kolonien von Klebsiella pneumoniae-Isolaten wurden auf eine Scheibe aufgetragen. Dann wurde eine 30 µg Cefoxitin-Scheibe auf die beimpfte Oberfläche der Lysinagarplatte gelegt. Die beimpfte Scheibe wurde dann fast berührend auf die Antibiotikascheibe gelegt, wobei die beimpfte Scheibenfläche die Agaroberfläche berührte. Die Platte wurde dann umgedreht und über Nacht in einem 37 °C heißen aeroben Inkubator inkubiert. Es wurden keine Veränderungen oder Hemmzonen festgestellt.
Dann trug er in der zweiten Phase des Experiments eine Mischung aus Kochsalzlösung, Tris-HCl, und Dinatriumethylendiamintetraessigsäure auf sterile Filterpapierscheiben. Die Scheiben wurden trocknen gelassen und bei 5 °C gelagert. Die Oberfläche einer Mueller-Hinton-Agarplatte wurde mit einem Rasen von Klebsiella pneumoniae beimpft. Unmittelbar vor der Verwendung wurden diese Scheiben mit Kochsalzlösung rehydriert und mehrere Kolonien von Escherichia coli-Isolaten wurden auf eine Scheibe aufgetragen. Dann wurde eine 30 µg Cefoxitin-Scheibe auf die beimpfte Oberfläche der Mueller-Hinton-Agarplatte gelegt. Die beimpfte Scheibe wurde dann fast berührend auf die Antibiotikascheibe gelegt, wobei die beimpfte Scheibenfläche die Agaroberfläche berührte. Die Platte wurde dann umgedreht und über Nacht in einem 37 °C heißen aeroben Inkubator inkubiert. Er stellte eine Abflachung der Hemmzone fest.
Alle der folgenden Aussagen sind falsch, außer:
(A) Eine Verringerung der Cefoxitinmenge in Cefoxitin-Scheiben von 30 µg auf 15 µg verbessert den Erfolg der ersten Phase des Experiments und die Abflachung der Hemmzone.
(B) Escherichia coli setzt Flavoenzyme frei, die eine Resistenz gegen Cefoxitin verleihen und in der zweiten Phase des Experiments zur Vertiefung der Cefoxitin-Hemmzone führen.
(C) Da die ideale Inkubationsbedingungen der Lysinagarplatte 48 Stunden bei 30-35 ºC sind, führt die Inkubation der Lysinagarplatte unter diesen veränderten Bedingungen zur Vertiefung der Cefoxitin-Hemmzone.
(D) Die Verwendung einer Tigecyclin-Scheibe anstelle einer Cefoxitin-Scheibe für die erste Phase des Experiments führt nicht zu einer Änderung des Ergebnisses.

„Der Mikrobiologe trug eine Mischung aus Kochsalzlösung, Tris-HCl und Dinatriumethylendiamintetraessigsäure auf sterile Filterpapierscheiben auf. Die Scheiben ließ man trocknen und lagerte sie bei 5 °C. Die Oberfläche der Lysin-Agarplatte wurde mit einem Escherichia-Rasen beimpft Unmittelbar vor der Verwendung wurden diese Scheiben mit Kochsalzlösung rehydriert und mehrere Kolonien von Klebsiella pneumoniae-Isolaten auf eine Scheibe aufgetragen. Dann,
Eine 30-µg-Cefoxitin-Scheibe wurde auf die beimpfte Oberfläche der Lysin-Agarplatte gelegt.
Die beimpfte Scheibe wurde dann so platziert, dass sie die Antibiotika-Scheibe fast berührte
wobei die beimpfte Scheibenoberfläche Kontakt mit der Agaroberfläche hat. Die Platte wurde dann umgedreht und über Nacht in einem aeroben Inkubator bei 37 °C inkubiert. Es wurde keine Veränderung oder Hemmzone festgestellt.

Dann trug er in der zweiten Phase des Experiments eine Mischung aus Kochsalzlösung, Tris-HCl und Dinatriumethylendiamintetraessigsäure auf sterile Filterpapierscheiben auf. Man ließ die Scheiben trocknen und lagerte sie bei 5°C. Die Oberfläche einer Mueller-Hinton-Agarplatte wurde mit einem Rasen von Klebsiella pneumoniae beimpft. Unmittelbar vor der Verwendung wurden diese Scheiben mit Kochsalzlösung rehydriert und mehrere Kolonien von Escherichia coli-Isolaten auf eine Scheibe aufgetragen. Dann,
Eine 30-µg-Cefoxitin-Scheibe wurde auf die beimpfte Oberfläche der Mueller-Hinton-Agarplatte gelegt.
Die beimpfte Scheibe wurde dann so platziert, dass sie die Antibiotika-Scheibe fast berührte
wobei die beimpfte Scheibenoberfläche Kontakt mit der Agaroberfläche hat. Die Platte wurde dann umgedreht und über Nacht in einem aeroben Inkubator bei 37 °C inkubiert. Er stellte eine Abflachung der Hemmzone fest.

Alle folgenden Aussagen sind falsch, außer:
(A) Eine Verringerung der Menge an Cefoxitin in Cefoxitin-Scheiben von 30 µg auf 15 µg wird den Erfolg der ersten Phase des Experiments verbessern und die Hemmzone abflachen.
(B) Escherichia coli setzte Flavoenzyme frei, die Resistenz gegen Cefoxitin verliehen und in der zweiten Phase des Experiments zur Einkerbung der Hemmzone von Cefoxitin führten
(C) Da die ideale Inkubationsbedingungen der Lysin-Agarplatte 48 Stunden bei 30–35 °C sind, führt die Inkubation der Lysin-Agarplatte unter diesen veränderten Bedingungen zu einer Einkerbung der Hemmzone von Cefoxitin
(D) Die Verwendung einer Tigecyclin-Scheibe anstelle einer Cefoxitin-Scheibe in der ersten Phase des Experiments führt nicht zu einer Änderung des Ergebnisses.

„Der Mikrobiologe trug eine Mischung aus Kochsalzlösung, Tris-HCl und Dinatriumethylendiamintetraessigsäure auf sterile Filterpapierscheiben auf. Die Scheiben ließ man trocknen und lagerte sie bei 5 °C. Die Oberfläche der Lysin-Agarplatte wurde mit einem Escherichia-Rasen beimpft Unmittelbar vor der Verwendung wurden diese Scheiben mit Kochsalzlösung rehydriert und mehrere Kolonien von Klebsiella pneumoniae-Isolaten auf eine Scheibe aufgetragen.
Eine 30-µg-Cefoxitin-Scheibe wurde auf die beimpfte Oberfläche der Lysin-Agarplatte gelegt.
Die beimpfte Scheibe wurde dann so platziert, dass sie die Antibiotika-Scheibe fast berührte
wobei die beimpfte Scheibenoberfläche Kontakt mit der Agaroberfläche hat. Die Platte wurde dann umgedreht und über Nacht in einem aeroben Inkubator bei 37 °C inkubiert. Es wurde keine Veränderung oder Hemmzone festgestellt.

Dann trug er in der zweiten Phase des Experiments eine Mischung aus Kochsalzlösung, Tris-HCl und Dinatriumethylendiamintetraessigsäure auf sterile Filterpapierscheiben auf. Man ließ die Scheiben trocknen und lagerte sie bei 5°C. Die Oberfläche einer Mueller-Hinton-Agarplatte wurde mit einem Rasen von Klebsiella pneumoniae beimpft. Unmittelbar vor der Verwendung wurden diese Scheiben mit Kochsalzlösung rehydriert und mehrere Kolonien von Escherichia coli-Isolaten auf eine Scheibe aufgetragen. Dann,
Eine 30-µg-Cefoxitin-Scheibe wurde auf die beimpfte Oberfläche der Mueller-Hinton-Agarplatte gelegt.
Die beimpfte Scheibe wurde dann so platziert, dass sie die Antibiotika-Scheibe fast berührte
wobei die beimpfte Scheibenoberfläche Kontakt mit der Agaroberfläche hat. Die Platte wurde dann umgedreht und über Nacht in einem aeroben Inkubator bei 37 °C inkubiert. Er stellte eine Abflachung der Hemmzone fest.

Alle folgenden Aussagen sind falsch, außer:
(A) Eine Verringerung der Menge an Cefoxitin in Cefoxitin-Scheiben von 30 µg auf 15 µg wird den Erfolg der ersten Phase des Experiments verbessern und die Hemmzone abflachen.
(B) Escherichia coli setzte Flavoenzyme frei, die Resistenz gegen Cefoxitin verliehen und in der zweiten Phase des Experiments zur Einkerbung der Hemmzone von Cefoxitin führten
(C) Da die ideale Inkubationsbedingungen der Lysin-Agarplatte 48 Stunden bei 30–35 °C sind, führt die Inkubation der Lysin-Agarplatte unter diesen veränderten Bedingungen zu einer Einkerbung der Hemmzone von Cefoxitin
(D) Die Verwendung einer Tigecyclin-Scheibe anstelle einer Cefoxitin-Scheibe in der ersten Phase des Experiments führt nicht zu einer Änderung des Ergebnisses.


Astronomen untersuchen einen Stern mit einem Teff von etwa 6000 K. Sie sind daran interessiert, die Oberflächenschwerkraft des Sterns anhand der Spektrallinien (EW < 100 mA) zweier chemischer Elemente, El1 und El2, spektroskopisch zu bestimmen. Angesichts der atmosphärischen Temperatur des Sterns befindet sich El1 größtenteils in der neutralen Phase, während El2 größtenteils ionisiert ist. Welche Linien reagieren am empfindlichsten auf die Schwerkraft der Oberfläche, die die Astronomen berücksichtigen sollten?
(A) El1 I (neutral)
(B) El2 I (neutral)
(C) El2 II (einfach ionisiert)
(D) El1 II (einfach ionisiert)

Astronomen untersuchen einen Stern mit einem Teff von etwa 6000 K. Sie sind daran interessiert, die Oberflächengravitation des Sterns spektroskopisch zu bestimmen, indem sie Spektrallinien (EW < 100 mA) von zwei chemischen Elementen, El1 und El2, verwenden. Angesichts der atmosphärischen Temperatur des Sterns befindet sich El1 größtenteils in der neutralen Phase, während El2 größtenteils ionisiert ist. Welche Linien sind für die Astronomen am empfindlichsten gegenüber der Oberflächengravitation?
(A) El1 I (neutral)
(B) El2 I (neutral)
(C) El2 II (einfach ionisiert)
(D) El1 II (einfach ionisiert)

Astronomen untersuchen einen Stern mit einem Teff von etwa 6000 K. Sie sind daran interessiert, die Oberflächengravitation des Sterns spektroskopisch zu bestimmen, indem sie Spektrallinien (EW < 100 mA) zweier chemischer Elemente, El1 und El2, verwenden. Angesichts der atmosphärischen Temperatur des Sterns befindet sich El1 größtenteils in der neutralen Phase, während El2 größtenteils ionisiert ist. Welche Linien sind für die Astronomen am empfindlichsten gegenüber der Oberflächengravitation?
(A) El1 I (neutral)
(B) El2 I (neutral)
(C) El2 II (einfach ionisiert)
(D) El1 II (einfach ionisiert)


Stellen Sie sich vor, ein radioaktiver Kern X(Z,A) kann durch Aussenden eines Alphateilchens mit einer partiellen Halbwertszeit von 3,0 Minuten in Y(Z-2, A-4) zerfallen. X(Z,A) kann auch durch Zerfall eines $\beta^-$ mit einer partiellen Halbwertszeit von 0,098 Minuten in Q(Z+1,A) zerfallen. Wenn die anfängliche Anzahl der X-Kerne 5*10^34 wäre, wie hoch ist dann die Aktivität des $\alpha$-Zerfalls nach 10 Minuten? Beachten Sie, dass hier Z die Protonenzahl und A die Massenzahl ist.
(A) 113,837 Bq
(B) 117,555 Bq
(C) 1,911*10^31 Bq
(D) 3,719 Bq

Stellen Sie sich vor, dass ein radioaktiver Kern X(Z,A) in Y(Z-2, A-4) zerfallen kann, indem er ein Alphateilchen mit einer Teilhalbwertszeit von 3,0 Minuten emittiert. X(Z,A) kann auch in Q(Z+1,A) zerfallen, indem ein $\beta^-$ mit einer Teilhalbwertszeit von 0,098 Minuten zerfällt. Wenn die anfängliche Anzahl der X-Kerne 5*10^34 wäre, wie groß wäre dann die Aktivität des $\alpha$-Zerfalls nach 10 Minuten? Beachten Sie, dass hier Z die Protonenzahl und A die Massenzahl ist.
(A) 113.837 Bq
(B) 117.555 Bq
(C) 1,911*10^31 Bq
(D) 3,719 Bq

Stellen Sie sich vor, ein radioaktiver Kern X(Z,A) kann in Y(Z-2, A-4) zerfallen, indem er ein Alphateilchen mit einer partiellen Halbwertszeit von 3,0 Minuten aussendet. X(Z,A) kann auch in Q(Z+1,A) zerfallen, indem er ein $\beta^-$ mit einer partiellen Halbwertszeit von 0,098 Minuten abstrahlt. Wenn die ursprüngliche Anzahl der X-Kerne 5*10^34 war, wie hoch ist dann die Aktivität des $\alpha$-Zerfalls nach 10 Minuten? Beachten Sie, dass hier Z die Protonenzahl und A die Massenzahl ist.
(A) 113,837 Bq
(B) 117,555 Bq
(C) 1,911*10^31 Bq
(D) 3,719 Bq


Wählen Sie die Hauptprodukte für die folgenden Reaktionen aus.
4-Aminophenol + 1 Äq. Propionsäureanhydrid + (Pyridin) ---> A
4-Propionamidophenylpropionat + NaOH (H2O) ---> B
(A) A = 4-Aminophenylpropionat, B = 4-Aminophenol
(B) A = N-(4-Hydroxyphenyl)propionamid, B = 4-Aminophenol
(C) A = 4-Aminophenylpropionat, B = N-(4-Hydroxyphenyl)propionamid
(D) A = N-(4-Hydroxyphenyl)propionamid, B = N-(4-Hydroxyphenyl)propionamid

Wählen Sie die Hauptprodukte für die folgenden Reaktionen aus.
4-Aminophenol + 1 Äq. Propionsäureanhydrid + (Pyridin) ---> A
4-Propionamidophenylpropionat + NaOH (H2O) ---> B
(A) A = 4-Aminophenylpropionat, B = 4-Aminophenol
(B) A = N-(4-Hydroxyphenyl)propionamid, B = 4-Aminophenol
(C) A = 4-Aminophenylpropionat, B = N-(4-Hydroxyphenyl)-propionamid
(D) A = N-(4-Hydroxyphenyl)propionamid, B = N-(4-Hydroxyphenyl)propionamid


Betrachten Sie ein System aus 3 Teilchen mit Spin 1/2 und einem Hamiltonoperator H, gegeben durch A*(S1*S2+S1*S3+S2*S3), wobei A eine Konstante und Si die Spinoperatoren von Teilchen i sind. Der Spinzustand kann durch psi=1/sqrt(3)*(up1*up2*down3+up1*down2*up3+down1*up2*up3) dargestellt werden, wobei upi und downi den Spin-up- und Spin-down-Zustand von Teilchen i darstellen. Ist dieser Zustand eine Eigenfunktion von H? Wenn ja, wie hoch ist seine Energie? Wenn nicht, wie hoch ist der Erwartungswert von E?
(A) Es ist ein Eigenzustand von H mit Eigenwert 2/3*A*hbar^2
(B) Es ist kein Eigenzustand von H mit Erwartungswert 3/4*A*hbar^2
(C) Es ist kein Eigenzustand von H mit Erwartungswert 2/3*A*hbar^2
(D) Es ist ein Eigenzustand von H mit Eigenwert 3/4*A*hbar^2

Betrachten Sie ein System aus 3 Spin-1/2-Teilchen mit einem Hamiltonoperator H, gegeben durch A*(S1*S2+S1*S3+S2*S3), wobei A eine Konstante und Si die Spinoperatoren des Teilchens i sind. Der Spin-Zustand kann durch psi=1/sqrt(3)*(up1*up2*down3+up1*down2*up3+down1*up2*up3) dargestellt werden, wobei upi und downi den Spin-up und den Spin-down darstellen Zustand des Teilchens i. Ist dieser Zustand eine Eigenfunktion von H? Wenn ja, welche Energie hat es? Wenn nicht, wie hoch ist der Erwartungswert von E?
(A) Es ist ein Eigenzustand von H mit dem Eigenwert 2/3*A*hbar^2
(B) Es ist kein Eigenzustand von H mit dem Erwartungswert 3/4*A*hbar^2
(C) Es ist kein Eigenzustand von H mit dem Erwartungswert 2/3*A*hbar^2
(D) Es ist ein Eigenzustand von H mit dem Eigenwert 3/4*A*hbar^2


Essigsäure wird unter Erhitzen mit Brom, Pyridin und Essigsäureanhydrid behandelt, wodurch Produkt 1 entsteht.

1 wird mit Ethanol und einer kleinen Menge Schwefelsäure erhitzt, wodurch Produkt 2 entsteht.

2 wird mit Natriumcyanid behandelt, wodurch Produkt 3 entsteht.

3 wird dann mit überschüssigem Natriumhydrid und 1,5-Dibrompentan behandelt, wodurch Endprodukt 4 entsteht.

Wie viele unterschiedliche Wasserstoffsignale sind im 1H-NMR-Spektrum von 4 erkennbar? (einige von ihnen weisen möglicherweise eine sehr ähnliche chemische Verschiebung auf und sind daher praktisch nicht unterscheidbar, aber die gewünschte Antwort ist die Anzahl der chemisch unterschiedlichen Wasserstoffe)
(A) 5
(B) 10
(C) 12
(D) 8

Essigsäure wird unter Erhitzen mit Brom, Pyridin und Essigsäureanhydrid behandelt, wodurch Produkt 1 entsteht.

1 wird mit Ethanol und einer kleinen Menge Schwefelsäure erhitzt, wodurch Produkt 2 entsteht.

2 wird mit Natriumcyanid behandelt, wodurch Produkt 3 entsteht.

3 wird dann mit überschüssigem Natriumhydrid und 1,5-Dibrompentan behandelt, wodurch Endprodukt 4 entsteht.

Wie viele unterschiedliche Wasserstoffsignale sind im 1H-NMR-Spektrum von 4 erkennbar? (einige von ihnen liegen möglicherweise sehr nahe beieinander in der chemischen Verschiebung und sind daher praktisch nicht unterscheidbar, aber die gewünschte Antwort ist die Anzahl der chemisch unterschiedlichen Wasserstoffe)
(A) 5
(B) 10
(C) 12
(D) 8


Ein Raumschiff, das sich mit einer Geschwindigkeit von 0,5 c entlang der x-Achse relativ zur Erde bewegt, schießt eine Kugel mit dem Geschwindigkeitsvektor (0,3 c, 0,1 c, 0,3 c) relativ zum Raumschiff nach vorne, wobei c die Lichtgeschwindigkeit ist. Wie groß ist der Geschwindigkeitsvektor des Geschosses, wie er von einem Beobachter auf der Erde gesehen wird?
(A) ~0,86c
(B) ~0,81 c
(C) ~0,79 c
(D) ~0,73c

Ein Raumschiff, das mit einer Geschwindigkeit von 0,5c entlang der x-Achse relativ zur Erde reist, schießt eine Kugel mit dem Geschwindigkeitsvektor (0,3c, 0,1c, 0,3c) relativ zum Raumschiff nach vorne, wobei c die Lichtgeschwindigkeit ist. Wie groß ist der Geschwindigkeitsvektor der Kugel aus Sicht eines Beobachters auf der Erde?
(A) ~0,86c
(B) ~0,81c
(C) ~0,79c
(D) ~0,73c


Gegeben sei eine Reaktion, die mit 4,5-Dimethylcyclohex-4-en-1,2-dicarbonitril beginnt und 2,3-Dimethylbuta-1,3-dien und Maleonitril bildet. Erklären Sie, warum die Zugabe von Maleinsäureanhydrid dazu führt, dass sich die Reaktion stärker nach rechts verschiebt.
(A) Maleinsäureanhydrid wandelt sich in 4,5-Dimethylcyclohex-4-en-1,2-dicarbonitril um, wodurch sich das Gleichgewicht in Richtung der Reaktanten verschiebt.
(B) Maleinsäureanhydrid reagiert mit 4,5-Dimethylcyclohex-4-en-1,2-dicarbonitril und die Zugabe eines Reaktanten führt zu einer Gleichgewichtsverschiebung in Richtung Produkte.
(C) Maleinsäureanhydrid wandelt sich in Maleonitril um und die Zugabe eines Produkts führt zu einer Gleichgewichtsverschiebung in Richtung Produkte.
(D) Maleinsäureanhydrid reagiert mit 2,3-Dimethylbuta-1,3-dien und die Entfernung eines Produkts führt zu einer Gleichgewichtsverschiebung in Richtung Produkte.

Gegeben sei eine Reaktion, die mit 4,5-Dimethylcyclohex-4-en-1,2-dicarbonitril beginnt und 2,3-Dimethylbuta-1,3-dien und Maleonitril bildet. Erklären Sie, warum die Zugabe von Maleinsäureanhydrid dazu führt, dass die Reaktion mehr nach rechts verschoben wird.
(A) Maleinsäureanhydrid wandelt sich in 4,5-Dimethylcyclohex-4-en-1,2-dicarbonitril um und dies führt dazu, dass sich das Gleichgewicht in Richtung der Reaktanten verschiebt.
(B) Maleinsäureanhydrid reagiert mit 4,5-Dimethylcyclohex-4-en-1,2-dicarbonitril und die Zugabe eines Reaktanten führt dazu, dass sich das Gleichgewicht in Richtung der Produkte verschiebt.
(C) Maleinsäureanhydrid wandelt sich in Maleinsäurenitril um und die Zugabe eines Produkts führt dazu, dass sich das Gleichgewicht in Richtung der Produkte verschiebt.
(D) Maleinsäureanhydrid reagiert mit 2,3-Dimethylbuta-1,3-dien und die Entfernung eines Produkts führt dazu, dass sich das Gleichgewicht in Richtung der Produkte verschiebt.

Gegeben sei eine Reaktion, die mit 4,5-Dimethylcyclohex-4-en-1,2-dicarbonitril beginnt und 2,3-Dimethylbuta-1,3-dien und Maleonitril bildet. Erklären Sie, warum die Zugabe von Maleinsäureanhydrid dazu führt, dass die Reaktion mehr nach rechts verschoben wird.
(A) Maleinsäureanhydrid wandelt sich in 4,5-Dimethylcyclohex-4-en-1,2-dicarbonitril um, und dies führt dazu, dass sich das Gleichgewicht in Richtung der Reaktanten verschiebt.
(B) Maleinsäureanhydrid reagiert mit 4,5-Dimethylcyclohex-4-en-1,2-dicarbonitril, und die Zugabe eines Reaktanten führt dazu, dass sich das Gleichgewicht in Richtung der Produkte verschiebt.
(C) Maleinsäureanhydrid wandelt sich in Maleonitril um, und die Zugabe eines Produkts führt dazu, dass sich das Gleichgewicht in Richtung der Produkte verschiebt.
(D) Maleinsäureanhydrid reagiert mit 2,3-Dimethylbuta-1,3-dien, und die Entfernung eines Produkts führt dazu, dass sich das Gleichgewicht in Richtung der Produkte verschiebt.


„Wissenschaftler wollen die plasmidvermittelte Chinolonresistenz von Klebsiella pneumoniae nachweisen, indem sie auf drei plasmidvermittelte Chinolonresistenzgene qnrA, qnrB und qnrS abzielen.
Er verwendete Multiplex-PCR unter den folgenden Bedingungen: 12,5 µl 2X PCR-Mastermix, 2 µl Plasmid-DNA-Extrakt, 1 µl äquimolare Primermischung und 9,5 µl nukleasefreies Wasser für ein Gesamtreaktionsvolumen von 25 µl.
Die DNA-Bänder wurden sichtbar gemacht, indem das Gel auf einen UV-Transilluminator gelegt wurde, und klare Banden wurden nur mit einer Größe von 40 Basenpaaren sichtbar gemacht.

Welche der folgenden Aussagen erklärt das vorherige Szenario? "
(A) Erfolgreicher Nachweis der Gene qnrA, qnrB und qnrS
(B) Ein notwendiger Schritt zur Umwandlung von RNA in DNA ist erforderlich
(C) Es ist unmöglich, dass Chinolone plasmidvermittelte Gene haben, da Chinolone bereits eine plasmideliminierende Wirkung haben.
(D) Das Primerdesign und seine Konzentrationen müssen optimiert werden

„Wissenschaftler streben danach, die plasmidvermittelte Chinolonresistenz von Klebsiella pneumoniae nachzuweisen, indem sie auf drei plasmidvermittelte Chinolonresistenzgene qnrA, qnrB und qnrS abzielen.
Er verwendete Multiplex-PCR unter den folgenden Bedingungen: 12,5 µl 2X PCR-Mastermix, 2 µl Plasmid-DNA-Extrakt, 1 µl äquimolare Primermischung und 9,5 µl nukleasefreies Wasser für ein Gesamtreaktionsvolumen von 25 µl.
DNA-Banden wurden sichtbar gemacht, indem das Gel auf einen UV-Transilluminator gelegt wurde, und klare Banden wurden nur mit einer Größe von 40 Basenpaaren sichtbar gemacht.

Welche der folgenden Aussagen erklärt das vorherige Szenario? "
(A) Erfolgreicher Nachweis der Gene qnrA, qnrB und qnrS
(B) Ein notwendiger Schritt zur Umwandlung von RNA in DNA ist erforderlich
(C) Es ist unmöglich, dass Chinolone plasmidvermittelte Gene haben, da Chinolone bereits eine plasmideliminierende Wirkung haben.
(D) Das Primerdesign und seine Konzentrationen müssen optimiert werden

„Wissenschaftler wollen plasmidvermittelte Chinolonresistenz von Klebsiella pneumoniae erkennen, indem sie drei plasmidvermittelte Chinolonresistenzgene qnrA, qnrB und qnrS anvisieren.
Er verwendete Multiplex-PCR unter den folgenden Bedingungen: 12,5 µl 2X PCR-Mastermix, 2 µl Plasmid-DNA-Extrakt, 1 µl äquimolare Primermischung und 9,5 µl nukleasefreies Wasser für insgesamt 25 µl Reaktionsvolumen.
DNA-Bänder wurden sichtbar gemacht, indem das Gel auf einen UV-Transilluminator gelegt wurde, und klare Bänder wurden nur mit einer Größe von 40 Basenpaaren sichtbar gemacht.

Welche der folgenden Aussagen erklärt das vorherige Szenario? "
(A) Erfolgreicher Nachweis von qnrA, qnrB und qnrS Gene
(B) Ein notwendiger Schritt zur Umwandlung von RNA in DNA ist erforderlich
(C) Es ist unmöglich, dass Chinolone plasmidvermittelte Gene haben, da Chinolone bereits eine plasmidheilende Wirkung haben.
(D) Primerdesign und ihre Konzentrationen müssen optimiert werden


Methyllithium wird langsam zu einer Lösung von Dichlortitanocen gegeben, wodurch das leuchtend orangefarbene Produkt 1 entsteht.

1 wird mit Kampfer erhitzt, um Produkt 2 herzustellen.

Überschüssiger Zinkstaub wird zu einer Diethyletherlösung von 2 gegeben, gefolgt von einer langsamen Zugabe von Trichloracetylchlorid, wodurch Produkt 3 entsteht.

Wie hoch sind die Multiplizitäten der beiden am stärksten entschirmten Wasserstoffkerne im 1H-NMR-Spektrum von 3 (es gibt mehrere mögliche Isomere von 3, aber die Antwort ist für alle gleich).
(A) Dublett, Multiplett
(B) Dublett von Dubletts, Dublett von Dubletts
(C) Singulett, Multiplett
(D) Dublett, Dublett

Methyllithium wird langsam zu einer Lösung von Dichlortitanocen gegeben, wobei ein leuchtend orangefarbenes Produkt 1 entsteht.

1 wird mit Kampfer erhitzt, wobei das Produkt 2 entsteht.

Überschüssiger Zinkstaub wird zu einer Diethyletherlösung von 2 gegeben, gefolgt von einer langsamen Zugabe von Trichloracetylchlorid, wodurch Produkt 3 entsteht.

Wie lauten die Multiplikationen der beiden am stärksten deshielded Wasserstoffkerne im 1H-nmr-Spektrum von 3 (es gibt mehrere mögliche Isomere von 3, aber die Antwort ist für alle gleich).
(A) Dublett, Multiplett
(B) Dublett, Dublett von Dubletten, Dublett von Dubletten
(C) Singulett, Multiplett
(D) Dublett, Dublett

Methyllithium wird langsam zu einer Lösung von Dichlortitanocen gegeben, wodurch das leuchtend orange Produkt 1 entsteht.

1 wird mit Kampfer erhitzt, um Produkt 2 zu erzeugen.

Überschüssiger Zinkstaub wird zu einer Diethyletherlösung von 2 gegeben, gefolgt von einer langsamen Zugabe von Trichloracetylchlorid, wodurch Produkt 3 entsteht.

Wie hoch sind die Multiplizitäten der beiden am stärksten entschirmten Wasserstoffkerne im 1H-NMR-Spektrum von 3 (es gibt mehrere mögliche Isomere von 3, aber die Antwort ist für alle dieselbe).
(A) Doublett, Multiplett
(B) Doublett von Doubletten, Doublett von Doubletten
(C) Singulett, Multiplett
(D) Doublett, Doublett


Während der Entwicklung eines mehrzelligen Organismus steuern und lenken komplexe Signalisierungsnetze die Entwicklung und schaffen Formen und Funktionen. Welcher Prozess findet bei der Regulierung der Entwicklung eines mehrzelligen Organismus wahrscheinlich nicht statt?
(A) DNA-Methylierung und Histon-Acetylierung modulieren im Zusammenspiel mit der durch kleine RNA vermittelten posttranskriptionellen Regulation synergistisch die räumliche und zeitliche Dynamik der Genexpression
(B) Phosphorylierung und Ubiquitinierung verschiedener Proteine zur Veränderung des molekularen Phänotyps von Zellen während der Entwicklung multizellulärer Organismen
(C) Kontrolle der Proteinexpression in verschiedenen Zellen eines sich entwickelnden Organismus durch mRNA-Trafficking
(D) Erkennung benachbarter Zellen durch kurze Zuckermoleküle zur Koordinierung der Zelldichte während der Entwicklung eines mehrzelligen Organismus

Während der Entwicklung eines mehrzelligen Organismus modulieren und lenken komplexe Signalnetzwerke die Entwicklung und schaffen Formen und Funktionen. Welcher Prozess tritt während der Regulierung der Entwicklung eines mehrzelligen Organismus wahrscheinlich nicht auf?
(A) DNA-Methylierung und Histonacetylierung modulieren in Verbindung mit kleiner RNA-vermittelter posttranskriptioneller Regulierung synergistisch die räumliche und zeitliche Dynamik der Genexpression
(B) Phosphorylierung und Ubiquitinierung verschiedener Proteine zur Veränderung des molekularen Phänotyps von Zellen während der Entwicklung eines mehrzelligen Organismus
(C) Kontrolle der Proteinexpression in verschiedenen Zellen eines sich entwickelnden Organismus durch mRNA-Transport
(D) Wahrnehmung benachbarter Zellen mithilfe kurzer Zuckermoleküle zur Koordination der Zelldichte während der Entwicklung eines mehrzelligen Organismus

Während der Entwicklung eines mehrzelligen Organismus modulieren und steuern komplexe Signalnetzwerke die Entwicklung und schaffen Formen und Funktionen. Welcher Prozess wird bei der Regulierung der Entwicklung mehrzelliger Organismen wahrscheinlich nicht stattfinden?
(A) DNA-Methylierung und Histonacetylierung modulieren zusammen mit der kleinen RNA-vermittelten posttranskriptionellen Regulation synergistisch die räumliche und zeitliche Dynamik der Genexpression
(B) Phosphorylierung und Ubiquitinierung verschiedener Proteine zur Veränderung des molekularen Phänotyps von Zellen während der Entwicklung mehrzelliger Organismen
(C) Kontrolle der Proteinexpression in verschiedenen Zellen eines sich entwickelnden Organismus durch mRNA-Handel
(D) Erfassung benachbarter Zellen mithilfe kurzer Zuckermoleküle, um die Zelldichte während der Entwicklung eines mehrzelligen Organismus zu koordinieren


Betrachten Sie ein endliches Wannenpotential, das in Region I (von x=0 bis x=a) den Wert 0 hat und außerhalb (für x<0 und x>a) den Wert V. Ein in diesem Wannenpotential gefangenes Teilchen hat die Energie E<V. Wie hoch könnte in einem solchen Szenario die wahrscheinliche Stromdichte J sein, die in den Regionen II und III erzeugt wird?
Die Wahrscheinlichkeit der Stromdichte J im quantenmechanischen System ist definiert durch:
J= (ℏ/(2mi))( Ψ∇Ψ*- Ψ*∇Ψ )
Dabei ist Ψ die Wellenfunktion im interessierenden Bereich.
(A) positiv und real
(B) negativ und real
(C) imaginär
(D) Null

Betrachten Sie ein endliches Wannenpotential, das in Region I (von x=0 bis x=a) den Wert 0 hat und außerhalb (für x<0 und x>a) den Wert V. Wie hoch könnte in einem solchen Szenario die wahrscheinliche Stromdichte J sein, die in den Regionen II und III erzeugt wird?
Die Wahrscheinlichkeitsstromdichte J im quantenmechanischen System ist definiert durch:
J= (ℏ/(2mi))( Ψ∇Ψ*- Ψ*∇Ψ )
Dabei ist Ψ die Wellenfunktion im interessierenden Bereich.
(A) positiv und real
(B) negativ und real
(C) imaginär
(D) Null

Betrachten wir ein begrenztes Potential, bei dem das Potential in Region I von x=0 bis x=a 0 ist und das Potential außerhalb von Region II (x<0) und Region III (x>a) als V definiert ist. Ein in diesem Potentialtopf gefangenes Teilchen hat nun die Energie E<V. Wie hoch könnte in einem solchen Szenario die wahrscheinliche Stromdichte J sein, die in den Regionen II und III erzeugt wird?
Die wahrscheinliche Stromdichte J im quantenmechanischen System ist definiert durch:
J= (ℏ/(2mi))( Ψ∇Ψ*- Ψ*∇Ψ )
Hier ist Ψ die Wellenfunktion in der Region von Interesse.
(A) positiv und reell
(B) negativ und reell
(C) imaginär
(D) Null


Ein System, dessen Wellenfunktion in einem Quantenharmonischen Oszillator bei t=0 gegeben ist durch:
\psi (x) = 1/\sqrt(3) \phi_0(x) + 1/\sqrt(2) phi_1(x) + 1/sqrt(6) \phi_3(x).
Berechnen Sie den Wert von (a a^{\dagger} + 1/2 )\hbar \omega für die gegebene Wellenfunktion.
(A) E= (5/2)\hbar \omega
(B) E=(17/12) \hbar \omega
(C) E= (13/12)\hbar \omega
(D) E= (3/2)\hbar \omega


Ein Forscher untersucht die Rolle des PI3K/MTOR-Signalwegs für das Überleben und die Proliferation von Brustkrebszellen. Anschließend behandeln sie MCF7-Zellen mit verschiedenen Medikamenten, die Komponenten des Signalwegs wie folgt blockieren:

1) DMSO (Kontrolle)
2) 2 µM MK2206
3) 5 µM GDC-0941
4) 1 nM Rapamycin
5) 1 nM Rapalink-1
6) 1 µM AZD8055
7) 0,5 µM GSK2126458
8) 2 µM MK2206 + 1 nM Rapalink-1
9) 2 µM MK2206 + 1 nM Rapamycin
10) 2 µM MK2206 + 1 µM AZD8055
11) 5 µM GDC-0941 + 1 nM Rapalink-1
12) 5 µM GDC-0941 + 1 nM Rapamycin
13) 5 µM GDC-0941 + 1 µM AZD8055

Alle diese Behandlungen wurden mit einer vollständigen Auffrischung des Mediums (enthaltend Serum) durchgeführt, wobei die Zellen für die Dauer der Behandlungen bei 37 °C und 5 % CO2 gehalten wurden. Gehen Sie davon aus, dass alle Arzneimittel in Konzentrationen angewendet wurden, die ihre Zielmoleküle vollständig hemmen und dass bei diesen Konzentrationen nur minimale Abweichungen von den Zielmolekülen auftreten. Nach 6 Stunden wurden Zelllysate für alle diese Behandlungsbedingungen hergestellt. Nach 48 Stunden wurde CyQuant Direct verwendet, um den Anteil lebender Zellen im Vergleich zur Kontrolle zu bestimmen (Kontrolle auf 100 % eingestellt). An den nach 6 Stunden geernteten Lysaten wurden Western Blots für verschiedene Phosphoproteine im Signalweg durchgeführt, um die Wirkung dieser Medikamente auf die Zellsignalisierung zu bestimmen. Gehen Sie davon aus, dass dies ausreichend Zeit für die vollständige Signalausbreitung an nachgeschaltete Pfadmitglieder ist. Für die Western Blots wurden für jede Bedingung sowohl Phosphostellen als auch entsprechende Gesamtproteine untersucht. Diese Signale wurden zueinander normalisiert (d. h. das pSer473-Akt-Signal wurde durch das Akt-Signal dividiert). Diese normalisierten Werte wurden dann als Prozentsatz der Kontrollwerte ausgedrückt (Kontrolle auf 100 % eingestellt). Nachfolgend sind die Signalwerte lebender Zellen und Phosphostellen als Prozentsatz der Kontrolle für jede Bedingung in der folgenden Reihenfolge aufgeführt: Lebende Zelle / pSer473 Akt / pThr308 Akt / pThr246 PRAS40 / pThr37 & pThr46 4E-BP1 / pThr389 S6K

1) 100 / 100 / 100 / 100 / 100 / 100
2) 70 / 0 / 0 / 0 / 70 / 30
3) 40 / 0 / 0 / 0 / 30 / 0
4) 80 / 250 / 250 / 150 / 100 / 0
5) 60 / 250 / 250 / 150 / 0 / 0
6) 50 / 0 / 250 / 150 / 0 / 0
7) 2 / 0 / 0 / 0 / 0 / 0
8) 7 / 0 / 0 / 0 / 0 / 0
9) 60 / 0 / 0 / 0 / 70 / 0
10) 5 / 0 / 0 / 0 / 0 / 0
11) 3 / 0 / 0 / 0 / 0 / 0
12) 40 / 0 / 0 / 0 / 30 / 0
13) 2 / 0 / 0 / 0 / 0 / 0

Welche Kinasen des PI3K/MTOR-Signalwegs übertragen den Großteil der Wirkung auf die Zellproliferation und das Überleben in MCF7?
(A) AKT1/2/3 (volle Redundanz der Isoformfunktion vorausgesetzt) und mTORC2
(B) PIK3CA/B/C/D (volle Redundanz der Isoformfunktion vorausgesetzt) und mTORC1
(C) mTORC1 und mTORC2
(D) AKT1/2/3 (volle Redundanz der Isoformfunktion vorausgesetzt) und mTORC1

Ein Forscher untersucht die Rolle des PI3K/MTOR-Signalwegs beim Überleben und der Verbreitung von Brustkrebszellen. Anschließend behandeln sie MCF7-Zellen mit verschiedenen Medikamenten, die Komponenten des Signalwegs wie folgt blockieren:

1) DMSO (Kontrolle)
2) 2 uM MK2206
3) 5 uM GDC-0941
4) 1 nM Rapamycin
5) 1 nM Rapalink-1
6) 1 uM AZD8055
7) 0,5 uM GSK2126458
8) 2 uM MK2206 + 1 nM Rapalink-1
9) 2 uM MK2206 + 1 nM Rapamycin
10) 2 uM MK2206 + 1 uM AZD8055
11) 5 uM GDC-0941 + 1 nM Rapalink-1
12) 5 uM GDC-0941 + 1 nM Rapamycin
13) 5 uM GDC-0941 + 1 uM AZD8055

Alle diese Behandlungen wurden mit einem vollständigen Medium (mit Serum) durchgeführt, wobei die Zellen für die Dauer der Behandlungen bei 37 °C und 5 % CO2 gehalten wurden. Nehmen wir an, dass alle Medikamente in Konzentrationen verabreicht wurden, die ihre Ziele vollständig hemmen, und dass die Off-Targets bei diesen Konzentrationen minimal sind. Nach 6 Stunden wurden Zelllysate für alle diese Behandlungsbedingungen hergestellt. Nach 48 Stunden wurde CyQuant Direct verwendet, um den Anteil lebender Zellen im Verhältnis zur Kontrolle zu bestimmen (Kontrolle auf 100 % eingestellt). Western Blots wurden an den nach 6 Stunden geernteten Lysaten für verschiedene Phosphoproteine im Signalweg durchgeführt, um die Wirkung dieser Medikamente auf die Zellsignalisierung zu bestimmen. Nehmen wir an, dass dies genug Zeit für die vollständige Signalausbreitung zu nachgelagerten Signalwegmitgliedern ist. Für die Western Blots wurden Phosphostellen sowie die entsprechenden Gesamtproteine für jede Bedingung untersucht. Diese Signale wurden zueinander normalisiert (d. h. das pSer473-Akt-Signal wurde durch das Akt-Signal geteilt). Diese normalisierten Werte wurden dann als Prozentsatz der Kontrollwerte ausgedrückt (Kontrolle auf 100 % gesetzt). Nachfolgend sind die Signalwerte für lebende Zellen und Phosphostellen als Prozentsatz der Kontrolle für jede Bedingung in der folgenden Reihenfolge angegeben: Lebende Zellen / pSer473 Akt / pThr308 Akt / pThr246 PRAS40 / pThr37 & pThr46 4E-BP1 / pThr389 S6K

1) 100 / 100 / 100 / 100 / 100 / 100
2) 70 / 0 / 0 / 0 / 70 / 30
3) 40 / 0 / 0 / 0 / 30 / 0
4) 80 / 250 / 250 / 150 / 100 / 0
5) 60 / 250 / 250 / 150 / 0 / 0
6) 50 / 0 / 250 / 150 / 0 / 0
7) 2 / 0 / 0 / 0 / 0 / 0
8) 7 / 0 / 0 / 0 / 0 / 0
9) 60 / 0 / 0 / 0 / 70 / 0
10) 5 / 0 / 0 / 0 / 0 / 0
11) 3 / 0 / 0 / 0 / 0 / 0
12) 40 / 0 / 0 / 0 / 30 / 0
13) 2 / 0 / 0 / 0 / 0 / 0

Welche Kinasen des PI3K/MTOR-Signalwegs übertragen den Großteil der Wirkung auf Zellproliferation und -überleben in MCF7?
(A) AKT1/2/3 (vollständige Redundanz der Isoformfunktion vorausgesetzt) und mTORC2
(B) PIK3CA/B/C/D (vollständige Redundanz der Isoformfunktion vorausgesetzt) und mTORC1
(C) mTORC1 und mTORC2
(D) AKT1/2/3 (vollständige Redundanz der Isoformfunktion vorausgesetzt) und mTORC1


Es gibt eine Reihe von RNAs mit einer Länge von etwa 200 oder mehr Nukleotiden, die keine oder nur eine begrenzte Kodierungskapazität haben. Welche der folgenden Aussagen enthält eine Unwahrheit über diese Klasse von RNAs?
(A) Sie können mit spezifischen Spleißfaktoren interagieren und dadurch alternatives Spleißen modulieren
(B) Sie können an der Inaktivierung ganzer Chromosomen beteiligt sein
(C) Sie können miRNAs binden, indem sie wie Schwämme wirken und so die Menge an miRNA-gerichteten Boten-RNAs erhöhen
(D) Sie können zirkularisieren, d. h. durch die Bildung einer Wasserstoffbindung zwischen den 5-Primär- und 3-Primär-Enden eine kontinuierliche geschlossene Schleife bilden.

Es gibt eine Reihe von RNAs mit einer Länge von etwa 200 oder mehr Nukleotiden, die keine oder nur eine begrenzte Codierungskapazität haben. Welche der folgenden Aussagen enthält eine Unwahrheit über diese RNA-Klasse?
(A) Sie können mit bestimmten Spleißfaktoren interagieren und so alternatives Spleißen modulieren.
(B) Sie können an der Inaktivierung ganzer Chromosomen beteiligt sein.
(C) Sie können miRNAs binden, indem sie wie Schwämme wirken, und so die Menge an miRNA-zielgerichteten Messenger-RNAs erhöhen.
(D) Sie können zirkulieren, d. h. durch Bildung einer Wasserstoffbrücke zwischen den 5-Prim- und 3-Prim-Enden eine kontinuierliche geschlossene Schleife bilden.


In unserer Galaxie hat sich eine Supernova ereignet. Ein Teil der Supernova-Auswürfe bewegt sich direkt auf das Zentrum der Galaxie zu. Sowohl der Auswurfteil als auch die Galaxie sind Inertialsysteme. Vom Referenzsystem der Auswürfe aus bewegt sich das Zentrum der Galaxie mit 60.000 km/s (sechzigtausend Kilometer pro Sekunde) darauf zu.

Welche Distanz legen die Auswürfe im Referenzsystem der Galaxie zurück, wenn im Referenzsystem der Auswürfe 50 Sekunden vergehen?

(Hinweis: Die Schwerkraft kann ignoriert werden, und Rotation und Umlauf der Galaxie können ignoriert werden.)
(A) 2.940.000 km.
(B) 2.880.000 km.
(C) 3.000.000 km.
(D) 3.060.000 km.

In unserer Galaxie ereignete sich eine Supernova. Ein Teil des Supernova-Auswurfs bewegt sich direkt auf das Zentrum der Galaxie zu. Sowohl der Ejektateil als auch die Galaxie sind Trägheitsbezugssysteme. Vom Bezugssystem der Ejekta aus bewegt sich das Zentrum der Galaxie mit 60.000 km/s (sechzigtausend Kilometer pro Sekunde) darauf zu.
Welche Distanz legt die Ejekta im Referenzrahmen der Galaxie zurück, wenn 50 Sekunden im Ejekta-Referenzrahmen vergehen?

(Hinweis: Die Schwerkraft kann ignoriert werden, und Rotation und Rotation der Galaxie können ignoriert werden.)
(A) 2.940.000 km.
(B) 2.880.000 km.
(C) 3.000.000 km.
(D) 3.060.000 km.

In unserer Galaxie hat eine Supernova stattgefunden. Ein Teil der Supernova-Auswürfe bewegt sich direkt auf das Zentrum der Galaxie zu. Sowohl der Auswurfteil als auch die Galaxie sind Inertialsysteme. Vom Referenzsystem der Auswürfe aus bewegt sich das Zentrum der Galaxie mit 60.000 km/s (sechzigtausend Kilometer pro Sekunde) darauf zu.

Welche Distanz legen die Auswürfe im Referenzsystem der Galaxie zurück, wenn im Referenzsystem der Auswürfe 50 Sekunden vergehen?

(Hinweis: Die Schwerkraft kann ignoriert werden, und Rotation und Umlauf der Galaxie können ignoriert werden.)
(A) 2.940.000 km.
(B) 2.880.000 km.
(C) 3.000.000 km.
(D) 3.060.000 km.


Wählen Sie geeignete Zwischenprodukte für die folgenden Reaktionen aus.
(Chlormethoxy)ethan + CH3OH ---> (Methoxymethoxy)ethan (A)
(2-Chlorethyl)(phenyl)sulfan + CH3CH2OH ---> (2-Ethoxyethyl)(phenyl)sulfan (B)
(A) A = Ethyl(methylen)oxonium, B = Ethyl(2-(phenylthio)ethyl)oxonium
(B) A = (Ethoxymethyl)(methyl)oxonium, B = 1-Phenylthiiran-1-ium
(C) A = (Ethoxymethyl)(methyl)oxonium, B = Ethyl(2-(phenylthio)ethyl)oxonium
(D) A = Ethyl(methylen)oxonium, B = 1-Phenylthiiran-1-ium


Eine Kugelschale mit Radius R weist auf ihrer Oberfläche eine elektrische Ladungsverteilung auf. Die Ladungsdichte an der Oberfläche wird durch σ(θ)=4 cos(θ) beschrieben, wobei θ der Winkel in Bezug auf die z-Achse ist. Innerhalb oder außerhalb der Schale befinden sich keine Ladungen, und im umgebenden Raum herrscht Vakuum. Ziel ist es, das elektrische Potenzial innerhalb (φ_in) und außerhalb (φ_out) der Kugelschale zu bestimmen.
(A) φ_in = (4r/3ε0)cos(θ), φ_out = (2R^3/3ε0 r^2)sin(θ)
(B) φ_in = 0 , φ _out = (2R^3/3ε0 r^2)sin(θ)
(C) φ_in = 0 , φ_out = (4R^3/3ε0 r^2)cos(θ)
(D) φ_in = (4r/3ε0)cos(θ) , φ_out = (4R^3/3ε0 r^2)cos(θ)

Eine Kugelschale mit einem Radius R weist auf ihrer Oberfläche eine elektrische Ladungsverteilung auf. Die Oberflächenladungsdichte wird durch σ(θ)=4 cos(θ) beschrieben, wobei θ der Winkel in Bezug auf die z-Achse ist. Es gibt keine Ladungen innerhalb oder außerhalb der Hülle und im umgebenden Raum herrscht ein Vakuum. Ziel ist es, das elektrische Potential innerhalb (φ_in) und außerhalb (φ_out) der Kugelschale zu bestimmen.
(A) φ_in = (4r/3ε0)cos(θ), φ_out = (2R^3/3ε0 r^2)sin(θ)
(B) φ_in = 0 , φ_out = (2R^3/3ε0 r^2)sin(θ)
(C) φ_in = 0 , φ_out = (4R^3/3ε0 r^2)cos(θ)
(D) φ_in = (4r/3ε0)cos(θ) , φ_out = (4R^3/3ε0 r^2)cos(θ)


Im Zentrum eines sphärischen Detektors werden Partikel kollidiert, wodurch eine neue Art von Partikeln entsteht, die sich ungehindert mit ultrarelativistischen Geschwindigkeiten bewegen, deren Zentrum bei etwa einem Lorentz-Faktor von ~20 liegt. Durchschnittlich erreicht ein Drittel dieser schnell zerfallenden Partikel die Innenwände des Detektors.
Der Radius des Detektors beträgt 30 Meter.

Welcher Lorentz-Faktor ist erforderlich, damit etwa zwei Drittel dieser Partikel die Innenwände des Detektors erreichen?
(A) 40
(B) 28
(C) 68
(D) 54

Partikel kollidieren im Zentrum eines kugelförmigen Detektors und erzeugen neue Partikeltypen, die sich ununterbrochen mit ultrarelativistischen Geschwindigkeiten bewegen, die stark um den Lorentz-Faktor von ~20 zentriert sind. Im Durchschnitt erreicht ein Drittel dieser schnell zerfallenden Partikel die Innenwände des Detektors.
Der Radius des Detektors beträgt 30 Meter.

Welcher Lorentzfaktor ist nötig, damit etwa zwei Drittel dieser Teilchen die Detektorinnenwände erreichen?
(A) 40
(B) 28
(C) 68
(D) 54

Im Zentrum eines sphärischen Detektors werden Partikel kollidiert, wodurch neue Partikeltypen entstehen, die sich ungehindert mit ultrarelativistischen Geschwindigkeiten bewegen, deren Zentrum bei etwa einem Lorentz-Faktor von ~20 liegt. Durchschnittlich erreicht ein Drittel dieser schnell zerfallenden Partikel die Innenwände des Detektors.
Der Radius des Detektors beträgt 30 Meter.

Welcher Lorentz-Faktor ist erforderlich, damit etwa zwei Drittel dieser Partikel die Innenwände des Detektors erreichen?
(A) 40
(B) 28
(C) 68
(D) 54


Man betrachte ein quantenmechanisches System mit einem Teilchen der Masse $m$, das sich in einem istropen dreidimensionalen Potential der Form $V(r) = 1/2 m \omega^2 r^2$ bewegt, das der wirkenden Kraft nach dem Hookeschen Gesetz entspricht. Dabei ist $\omega$ die Winkelfrequenz der Schwingung und $r$ der radiale Abstand des Teilchens vom Ursprung in sphärischer Polarkoordinate. Welchen Energiewert hat der dritte angeregte Zustand, und wie viele linear unabhängige Eigenfunktionen sind für denselben Energieeigenwert möglich?
(A) 11 \pi^2 \hbar^2 / (2m r^2), 3
(B) 11 \pi^2 \hbar^2 / (2m r^2), 10
(C) (9/2) \hbar \omega, 3
(D) (9/2) \hbar \omega , 10

Betrachten Sie ein quantenmechanisches System, das ein Teilchen der Masse $m$ enthält, das sich in einem istropen dreidimensionalen Potential der Form $V(r) = 1/2 m \omega^2 r^2$ bewegt, was der einwirkenden Kraft gemäß Hookeschem Gesetz entspricht. Dabei ist $\omega$ die Winkelfrequenz der Schwingung und $r$ der radiale Abstand des Teilchens vom Ursprung in der Kugelpolarkoordinate. Wie hoch ist der Energiewert des dritten angeregten Zustands und wie viele linear unabhängige Eigenfunktionen sind für denselben Energieeigenwert möglich?
(A) 11 \pi^2 \hbar^2 / (2m r^2), 3
(B) 11 \pi^2 \hbar^2 / (2m r^2), 10
(C) (9/2) \hbar \omega, 3
(D) (9/2) \hbar \omega , 10


Im Verlauf einer Peptidchemie behandeln Sie das geschützte Dipeptid Boc-Phe-Ala(3-N3)-OMe [Phe = L-Phenylalanin; Ala(3-N3) = 3-Azido-L-Alanin] mit einer nukleophilen Base. Sie beobachten, dass die Azidogruppe während der Reaktion durch die nukleophile Base ersetzt wird (d. h. das Nukleophil bildet eine Bindung mit dem β-Kohlenstoff der Aminosäure). Sie postulieren, dass eine β-Eliminierungs-Michael-Additionsreaktion stattgefunden hat.

Welche der folgenden Aussagen ist der stärkste Beweis für diesen Mechanismus?
(A) Die Löslichkeit des Dipeptids nimmt ab und nimmt dann zu.
(B) Im IR-Spektrum des Produkts fehlt ein Azidabsorptionsband.
(C) Es gibt einen Unterschied in der Stärke der optischen Drehung zwischen dem Ausgangsdipeptid und dem Produkt.
(D) Im Verlauf der Reaktion erscheinen zwei neue LCMS-Peaks, die beide das gleiche Massenspektrum aufweisen.

Im Rahmen einiger Peptidchemie behandeln Sie das geschützte Dipeptid Boc-Phe-Ala(3-N3)-OMe [Phe = L-Phenylalanin; Ala(3-N3) = 3-Azido-L-Alanin] mit einer nukleophilen Base. Sie beobachten, dass die Azidogruppe während der Reaktion durch die nukleophile Base ersetzt wird (d. h. das Nukleophil geht eine Bindung mit dem β-Kohlenstoff der Aminosäure ein). Sie postulieren, dass eine β-Eliminierung-Michael-Additionsreaktion stattgefunden hat.

Welcher der folgenden Beweise ist der stärkste Beweis für diesen Mechanismus?
(A) Die Löslichkeit des Dipeptids nimmt ab und steigt dann an.
(B) Im IR-Spektrum des Produkts fehlt eine Azid-Absorptionsbande.
(C) Es gibt einen Unterschied in der Größe der optischen Drehung zwischen dem Ausgangsdipeptid und dem Produkt.
(D) Im Verlauf der Reaktion erscheinen zwei neue LCMS-Peaks, die beide das gleiche Massenspektrum aufweisen.


Ein organischer Chemiker führt zwei Reaktionen durch.
Reaktion I:
(S)-5-Methoxyhexan-3-on wird mit LAH behandelt, gefolgt von einer sauren Aufarbeitung.
Reaktion II:
Pentan-2,4-dion wird mit überschüssigem NaBH4 behandelt, gefolgt von einer sauren Aufarbeitung.
Der Fortschritt der Reaktionen wird mithilfe von TLC überwacht. Nachdem die Reaktionen zu 100 % abgeschlossen sind, werden die Produkte aus beiden Reaktionen kombiniert und sowohl auf einer HPLC-Säule mit normaler Phase als auch auf einer HPLC-Säule, die mit der chiralen stationären Phase gefüllt ist, laufen gelassen.
Wie viele Peaks beobachtet der Chemiker in den Chromatogrammen?
(A) 4 Peaks bei chiraler HPLC und 2 Peaks bei normalphasiger HPLC
(B) 3 Peaks bei chiraler HPLC und 2 Peaks bei normalphasiger HPLC
(C) 3 Peaks sowohl bei chiraler HPLC als auch bei normalphasiger HPLC
(D) 5 Peaks bei chiraler HPLC und 4 Peaks bei normalphasiger HPLC

Ein organischer Chemiker führt zwei Reaktionen durch.
Reaktion I:
(S)-5-Methoxyhexan-3-on wird mit LAH behandelt, gefolgt von einer sauren Aufarbeitung.
Reaktion II:
Pentan-2,4-dion wird mit überschüssigem NaBH4 behandelt, gefolgt von einer sauren Aufarbeitung.
Der Fortschritt der Reaktionen wird mithilfe von DC überwacht. Nachdem die Reaktionen zu 100 % abgeschlossen sind, werden die Produkte aus beiden Reaktionen kombiniert und sowohl auf einer HPLC-Säule mit normaler Phase als auch auf einer HPLC-Säule mit der chiralen stationären Phase laufen gelassen.
Wie viele Peaks beobachtet der Chemiker in den Chromatogrammen?
(A) 4 Peaks bei chiraler HPLC und 2 Peaks bei normalphasiger HPLC
(B) 3 Peaks bei chiraler HPLC und 2 Peaks bei normalphasiger HPLC
(C) 3 Peaks sowohl bei chiraler HPLC als auch bei normalphasiger HPLC
(D) 5 Peaks bei chiraler HPLC und 4 Peaks bei normalphasiger HPLC


Eine Platte aus elektrisch verbundenen Metallschichten A und B wird bei senkrechtem Einfall einer monochromatischen ebenen Welle ausgesetzt. Die Hauttiefe und -dicke der Schicht A beträgt 1 Mikrometer bzw. 460,5 Nanometer. Welcher der folgenden Werte der Eindringtiefe bzw. -dicke der Schicht B würde eine Leistungsdämpfung der einfallenden Welle durch die Platte um insgesamt 3 dB bewirken?
(A) 4 Mikrometer und 460,5 Nanometer
(B) 2 Mikrometer und 921,0 Nanometer
(C) 2 Mikrometer und 230,2 Nanometer
(D) 4 Mikrometer und 921,0 Nanometer

Ein Blech aus elektrisch verbundenen Metallschichten A und B wird einer monochromatischen ebenen Welle bei senkrechtem Einfall ausgesetzt. Die Eindringtiefe und -dicke von Schicht A beträgt 1 Mikrometer bzw. 460,5 Nanometer. Welcher der folgenden Werte für Eindringtiefe bzw. -dicke von Schicht B würde eine Leistungsdämpfung der einfallenden Welle durch das Blech von insgesamt 3 dB erreichen?
(A) 4 Mikrometer und 460,5 Nanometer
(B) 2 Mikrometer und 921,0 Nanometer
(C) 2 Mikrometer und 230,2 Nanometer
(D) 4 Mikrometer und 921,0 Nanometer


Welches der folgenden Moleküle entsteht, wenn 5-Butylnona-2,6-dien erhitzt wird?
(A) 5-Ethylundeca-2,6-dien
(B) 5-Ethyl-4-methyldeca-2,6-dien
(C) 5-Ethyl-4-methyldeca-2,6-dien
(D) 4-Ethyl-3-methyldeca-1,5-dien

Welches der folgenden Moleküle entsteht beim Erhitzen von 5-Butylnona-2,6-dien?
(A) 5-Ethylundeca-2,6-dien
(B) 5-Ethyl-4-methyldeca-2,6-dien
(C) 5-Ethyl-4-methyldeca-2,6-dien
(D) 4-Ethyl-3-methyldeca-1,5-dien


Herzlichen Glückwunsch, Sie haben gerade Ihren Traumjob in einem der besten Strukturbiologielabore der Stanford University in Kalifornien ergattert. Ohne weitere Umschweife erklärt der leitende Forscher, dass die Priorität im Moment darin besteht, BL21 in E. coli zu produzieren und dann das menschliche P53-Protein so schnell wie möglich zu reinigen.

Die Aminosäuresequenz dieses Proteins lautet wie folgt:
MEEPQSDPSVEPPLSQETFSDLWKLLPENNVLSPLPSQAMDDLMLSPDDIEQWFTEDPGPDEAPRMPEAAPPVAPAPAAPTPAAPAPAPSWPLSSSVPSQKTYQGSYGFRLGFLHSGTAKSVTCTYSPALNKMFCQLAKTCPVQLWVDSTPPGTRVRAMAIYKQSQHMTEVVRRCPHHERCSDSDGLAPPQHLIRVEGNLRVEYLDDRNTFRHSVVVPYEPPEVGSDCTTIHYNYMCNSSCMGGMNRRPILTIITLEDSSGNLLGRNSFEVRVCACPGRDRRTEEENLRKKGEPHHELPPGSTKRALPNNTSSSPQPKKKPLDGEYFTLQIRGRERFEMFRELNEALELKDAQAGKEPGGSRAHSSHLKSKKGQSTSRHKKLMFKTEGPDSD

Sie erhalten 4 Plasmide mit 4 verschiedenen Sequenzen, welche werden Sie verwenden?
(A) ATGGAGGAGCCGCAGTCAGATCCTAGCGTCGAGCCCCCTCTGAGTCAGGAAACATTTTCAGACCTATGGA
AACTACTTCCTGAAAACAACGTTCTGTCCCCCTTGCCGTCCCAAGCAATGGATGATTTGATGCTGTCCCC
GGACGATATTGAACAATGGTTCACTGAAGACCCAGGTCCAGATGAAGCTCCCAGAATGCCAGAGGCTGCT
CCCCCCGTGGCCCCTGCACCAGCAGCTCCTACACCGGCGGCCCCTGCACCAGCCCCCTCCTGGCCCCTGT
CATCTTCTGTCCCTTCCCAGAAAACCTACCAGGGCAGCTACGGTTTCCGTCTGGGCTTCTTGCATTCTGG
GACAGCCAAGTCTGTGACTTGCACGTACTCCCCTGCCCTCAACAAGATGTTTTGCCAACTGGCCAAGACC
TGCCCTGTGCAGCTGTGGGTTGATTCCACACCCCCGCCCGGCACCCGCGTCCGCGCCATGGCCATCTACA
AGCAGTCACAGCACATGACGGAGGTTGTGAGGCGCTGCCCCCACCATGAGCGCTGCTCAGATAGCGATGG
TCTGGCCCCTCCTCAGCATCTTATCCGAGTGGAAGGAAATTTGCGTGTGGAGTATTTGGATGACAGAAAC
ACTTTTCGACATAGTGTGGTGGTGCCCTATGAGCCGCCTGAGGTTGGCTCTGACTGTACCACCATCCACT
ACAACTACATGTGTAACAGTTCCTGCATGGGCGGCATGAACCGGAGGCCCATCCTCACCATCATCACACT
GGAAGACTCCAGTGGTAATCTACTGGGACGGAACAGCTTTGAGGTGCGTGTTTGTGCCTGTCCTGGGAGA
GACCGGCGCACAGAGGAAGAGAATCTCCGCAAGAAAGGGGAGCCTCACCACGAGCTGCCCCCAGGGAGCA
CTAAGCGAGCACTGCCCAACAACACCAGCTCCTCTCCCCAGCCAAAGAAGAAACCACTGGATGGAGAATA
TTTCACCCTTCAGATCCGTGGGCGTGAGCGCTTCGAGATGTTCCGAGAGCTGAATGAGGCCTTGGAACTC
AAGGATGCCCAGGCTGGGAAGGAGCCAGGGGGGAGCAGGGCTCACTCCAGCCACCTGAAGTCCAAAAAGG
GTCAGTCTACCTCCCGCCATAAAAAACTCATGTTCAAGACAGAAGGGCCTGACTCAGACTGA
(B) ATGGAGGAGCCGCAGTCAGATCCTAGCGTCGAGCCGCCTCTGAGTCAGGAAACATTTTCAGACCTATGGA
AACTACTTCCTGAAAACAACGTTCTGTCCCCGTTGCCGTCCCAAGCAATGGATGATTTGATGCTGTCCCC
GGACGATATTGAACAATGGTTCACTGAAGACCCAGGTCCAGATGAAGCTCCCAGAATGCCAGAGGCTGCT
CCCCCCGTGGCCCCTGCACCAGCAGCTCCTACACCGGCGGCCCCTGCACCAGCCCCCTCCTGGCCCCTGT
CATCTTCTGTCCCTTCCCAGAAAACCTACCAGGGCAGCTACGGTTTCCGTCTGGGCTTCTTGCATTCTGG
GACAGCCAAGTCTGTGACTTGCACGTACTCCCCTGCCCTCAACAAGATGTTTTGCCAACTGGCCAAGACC
TGCCCTGTGCAGCTGTGGGTTGATTCCACACCCCCGCCCGGCACCCGCGTCCGCGCCATGGCCATCTACA
AGCAGTCACAGCACATGACGGAGGTTGTGAGGCGCTGCCCCCACCATGAGCGCTGCTCAGATAGCGATGG
TCTGGCCCCTCCTCAGCATCTTATCCGAGTGGAAGGAAATTTGCGTGTGGAGTATTTGGATGACAGAAAC
ACTTTTCGACATAGTGTGGTGGTGCCCTATGAGCCGCCTGAGGTTGGCTCTGACTGTACCACCATCCACT
ACAACTACATGTGTAACAGTTCCTGCATGGGCGGCATGAACCGGAGGCCCATCCTCACCATCATCACACT
GGAAGACTCCAGTGGTAATCTACTGGGACGGAACAGCTTTGAGGTGCGTGTTTGTGCCTGTCCTGGGAGA
GACCGGCGCACAGAGGAAGAGAATCTCCGCAAGAAAGGGGAGCCTCACCACGAGCTGCCGCCAGGGAGCA
CTAAGCGAGCACTGCCCAACAACACCAGCTCCTCTCCCCAGCCAAAGAAGAAACCACTGGATGGAGAATA
TTTCACCCTTCAGATCCGTGGGCGTGAGCGCTTCGAGATGTTCCGAGAGCTGAATGAGGCCTTGGAACTC
AAGGATGCCCAGGCTGGGAAGGAGCCAGGGGGGAGCAGGGCTCACTCCAGCCACCTGAAGTCCAAAAAGG
GTCAGTCTACCTCCCGCCATAAAAAACTCATGTTCAAGACAGAAGGGCCTGACTCAGACTGA
(C) ATGGAGGAGCCGCAGTCAGATCCTAGCGTCGAGCCGCCTCTGAGTCAGGAAACATTTTCAGACCTATGGAAACTACTTCCTGAAAACAACGTTCTGTCCCCGTTGCCGTCCCAAGCAATGGATGATTTGATGCTGTCCCCGGACGATATTGAACAATGGTTCACTGAAGACCCAGGTCCAGATGAAGCTCCCAGAATGCCAGAGGCTGCTCCCCCCGTGGCCCCTGCACCAGCAGCTCCTACACCGGCGGCCCCTGCACCAGCCCCCTCCTGGCCCCTGTCATCTTCTGTCCCTTCCCAGAAAACCTACCAGGGCAGCTACGGTTTCCGTCTGGGCTTCTTGCATTCTGGGACAGCCAAGTCTGTGACTTGCACGTACTCCCCTGCCCTCAACAAGATGTTTTGCCAACTGGCCAAGACCTGCCCTGTGCAGCTGTGGGTTGATTCCACACCCCCGTCCGGCACCCGCGTCCGCGCCATGGCCATCTACAAGCAGTCACAGCACATGACGGAGGTTGTGAGGCGCTGCCCCCACCATGAGCGCTGCTCAGATAGCGATGGTCTGGCCCCTCCTCAGCATCTTATCCGAGTGGAAGGAAATTTGCGTGTGGAGTATTTGGATGACAGAAACACTTTTCGACATAGTGTGGTGGTGCCCTATGAGCCGCCTGAGGTTGGCTCTGACTGTACCACCATCCACTACAACTACATGTGTAACAGTTCCTGCATGGGCGGCATGAACCGGAGGCCCATCCTCACCATCATCACACTGGAAGACTCCAGTGGTAATCTACTGGGACGGAACAGCTTTGAGGTGCGTGTTTGTGCCTGTCCTGGGAGAGACCGGCGCACAGAGGAAGAGAATCTCCGCAAGAAAGGGGAGCCTCACCACGAGCTGCCGCCAGGGAGCACTAAGCGAGCACTGCCCAACAACACCAGCTCCTCTCCCCAGCCAAAGAAGAAACCACTGGATGGAGAATATTTCACCCTTCAGATCCGTGGGCGTGAGCGCTTCGAGATGTTCCGAGAGCTGAATGAGGCCTTGGAACTCAAGGATGCCCAGGCTGGGAAGGAGCCAGGGGGGAGCAGGGCTCACTCCAGCCACCTGAAGTCCAAAAAGGGTCAGTCTACCTCCCGCCATAAAAAACTCATGTTCAAGACAGAAGGGCCTGACTCAGACTGA
(D) ATGGAGGAGCCGCAGTCAGATCCTAGCGTCGAGCCGCCTCTGAGTCAGGAAACATTTTCAGACCTATGGAAACTACTTCCTGAAAACAACGTTCTGTCCCCGTTGCCGTCCCAAGCAATGGATGATTTGATGCTGTCCCCGGACGATATTGAACAATGGTTCACTGAAGACCCAGGTCCAGATGAAGCTCCCCGCATGCCAGAGGCTGCTCCCCCCGTGGCCCCTGCACCAGCAGCTCCTACACCGGCGGCCCCTGCACCAGCCCCCTCCTGGCCCCTGTCATCTTCTGTCCCTTCCCAGAAAACCTACCAGGGCAGCTACGGTTTCCGTCTGGGCTTCTTGCATTCTGGGACAGCCAAGTCTGTGACTTGCACGTACTCCCCTGCCCTCAACAAGATGTTTTGCCAACTGGCCAAGACCTGCCCTGTGCAGCTGTGGGTTGATTCCACACCCCCGCCCGGCACCCGCGTCCGCGCCATGGCCATCTACAAGCAGTCACAGCACATGACGGAGGTTGTGAGGCGCTGCCCCCACCATGAGCGCTGCTCAGATAGCGATGGTCTGGCCCCTCCTCAGCATCTTATCCGCGTGGAAGGAAATTTGCGTGTGGAGTATTTGGATGACAGAAACACTTTTCGACATAGTGTGGTGGTGCCCTATGAGCCGCCTGAGGTTGGCTCTGACTGTACCACCATCCACTACAACTACATGTGTAACAGTTCCTGCATGGGCGGCATGAACCGGAGGCCCATCCTCACCATCATCACACTGGAAGACTCCAGTGGTAATCTACTGGGACGGAACAGCTTTGAGGTGCGTGTTTGTGCCTGTCCTGGGCGCGACCGGCGCACAGAGGAAGAGAATCTCCGCAAGAAAGGGGAGCCTCACCACGAGCTGCCGCCAGGGAGCACTAAGCGAGCACTGCCCAACAACACCAGCTCCTCTCCCCAGCCAAAGAAGAAACCACTGGATGGAGAATATTTCACCCTTCAGATCCGTGGGCGTGAGCGCTTCGAGATGTTCCGAGAGCTGAATGAGGCCTTGGAACTCAAGGATGCCCAGGCTGGGAAGGAGCCAGGGGGGAGCAGGGCTCACTCCAGCCACCTGAAGTCCAAAAAGGGTCAGTCTACCTCCCGCCATAAAAAACTCATGTTCAAGACAGAAGGGCCTGACTCAGACTGA

Herzlichen Glückwunsch, Sie haben gerade Ihren Traumjob in einem der besten Labore für Strukturbiologie an der Stanford University in Kalifornien gefunden. Ohne weitere Umschweife erklärt der Hauptforscher, dass die Priorität im Moment darin besteht, in E. coli BL21 zu produzieren und dann so schnell wie möglich das menschliche P53-Protein zu reinigen.

Die Aminosäuresequenz dieses Proteins ist wie folgt:
MEEPQSDPSVEPPLSQETFSDLWKLLPENNVLSPLPSQAMDDLMLSPDDIEQWFTEDPGPDEAPRMPEAAPPVAPAPAAPTPAAPAPAPSWPLSSSVPSQKTYQGSYGFRLGFLHSGTAKSVTCTYSPALNKMFCQLAKTCPVQLWVDSTPPPGTRVRAMAIYKQSQHMTEVVRRCPHHERCDSDGLAPPQHLIRVEGNLRVEYLDDRNTFR HSVVVPYEPPEVGSDCTTIHYNYMCNSSCMGGMNRRPILTIITLEDSSGNLLGRNSFEVRVCACPGRDRRTEEENLRKKGEPHHELPPGSTKRALPNNTSSSPQPKKKPLDGEYFTLQIRGRERFEMFRELNEALELKDAQAGKEPGGSRAHSSHLKSKKGQSTSRHKKLMFKTEGPDSD

Sie erhalten 4 Plasmide mit 4 verschiedenen Sequenzen. Welches werden Sie verwenden?
(A) ATGGAGGAGCCGCAGTCAGATCCTAGCGTCGAGCCCCCTCTGAGTCAGGAAACATTTTCAGACCTATGGA
AACTACTTCCTGAAAACAACGTTCTGTCCCCCTTGCCGTCCCAAGCAATGGATGATTTGATGCTGTCCCC
GGACGATATTGAACAATGGTTCACTGAAGACCCAGGTCCAGATGAAGCTCCCAGAATGCCAGAGGCTGCT
CCCCCCGTGGCCCCTGCACCAGCAGCTCCTACACCGGCGGCCCCTGCACCAGCCCCCTCCTGGCCCCTGT
CATCTTCTGTCCCTTCCCAGAAAACCTACCAGGGCAGCTACGGTTTCCGTCTGGGCTTCTTGCATTCTGG
GACAGCCAAGTCTGTGACTTGCACGTACTCCCCTGCCCTCAACAAGATGTTTTGCCAACTGGCCAAGACC
TGCCCTGTGCAGCTGTGGGTTGATTCCACACCCCCGCCCGGCACCCGCGTCCGCGCCATGGCCATCTACA
AGCAGTCACAGCACATGACGGAGGTTGTGAGGCGCTGCCCCCACCATGAGCGCTGCTCAGATAGCGATGG
TCTGGCCCCTCCTCAGCATCTTATCCGAGTGGAAGGAAATTTGCGTGTGGAGTATTTGGATGACAGAAAC
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ACAACTACATGTGTAACAGTTCCTGCATGGGCGGCATGAACCGGAGGCCCATCCTCACCATCATCACACT
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GACCGGCGCACAGAGGAAGAGAATCTCCGCAAGAAAGGGGAGCCTCACCACGAGCTGCCCCCAGGGAGCA
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AAGGATGCCCAGGCTGGGAAGGAGCCAGGGGGGAGCAGGGCTCACTCCAGCCACCTGAAGTCCAAAAAGG
GTCAGTCTACCTCCCGCCATAAAAAACTCATGTTCAAGACAGAAGGGCCTGACTCAGACTGA
(B) ATGGAGGAGCCGCAGTCAGATCCTAGCGTCGAGCCGCCTCTGAGTCAGGAAACATTTTCAGACCTATGGA
AACTACTTCCTGAAAACAACGTTCTGTCCCCGTTGCCGTCCCAAGCAATGGATGATTTGATGCTGTCCCC
GGACGATATTGAACAATGGTTCACTGAAGACCCAGGTCCAGATGAAGCTCCCAGAATGCCAGAGGCTGCT
CCCCCCGTGGCCCCTGCACCAGCAGCTCCTACACCGGCGGCCCCTGCACCAGCCCCCTCCTGGCCCCTGT
CATCTTCTGTCCCTTCCCAGAAAACCTACCAGGGCAGCTACGGTTTCCGTCTGGGCTTCTTGCATTCTGG
GACAGCCAAGTCTGTGACTTGCACGTACTCCCCTGCCCTCAACAAGATGTTTTGCCAACTGGCCAAGACC
TGCCCTGTGCAGCTGTGGGTTGATTCCACACCCCCGCCCGGCACCCGCGTCCGCGCCATGGCCATCTACA
AGCAGTCACAGCACATGACGGAGGTTGTGAGGCGCTGCCCCCACCATGAGCGCTGCTCAGATAGCGATGG
TCTGGCCCCTCCTCAGCATCTTATCCGAGTGGAAGGAAATTTGCGTGTGGAGTATTTGGATGACAGAAAC
ACTTTTCGACATAGTGTGGTGGTGCCCTATGAGCCGCCTGAGGTTGGCTCTGACTGTACCACCATCCACT
ACAACTACATGTGTAACAGTTCCTGCATGGGCGGCATGAACCGGAGGCCCATCCTCACCATCATCACACT
GGAAGACTCCAGTGGTAATCTACTGGGACGGAACAGCTTTGAGGTGCGTGTTTGTGCCTGTCCTGGGAGA
GACCGGCGCACAGAGGAAGAGAATCTCCGCAAGAAAGGGGAGCCTCACCACGAGCTGCCGCCAGGGAGCA
CTAAGCGAGCACTGCCCAACAACACCAGCTCCTCTCCCCAGCCAAAGAAGAAACCACTGGATGGAGAATA
TTTCACCCTTCAGATCCGTGGGCGTGAGCGCTTCGAGATGTTCCGAGAGCTGAATGAGGCCTTGGAACTC
AAGGATGCCCAGGCTGGGAAGGAGCCAGGGGGGAGCAGGGCTCACTCCAGCCACCTGAAGTCCAAAAAGG
GTCAGTCTACCTCCCGCCATAAAAAACTCATGTTCAAGACAGAAGGGCCTGACTCAGACTGA
(C) ATGGAGGAGCCGCAGTCAGATCCTAGCGTCGAGCCGCCTCTGAGTCAGGAAACATTTTCAGACCTATGGAAACTACTTCCTGAAAACAACGTTCTGTCCCCGTTGCCGTCCCAAGCAATGGATGATTTGATGCTGTCCCCGGACGATATTGAACAATGGTTCACTGAAGACCCAGGTCCAGATGAAGCTCCCAGAATGCCAGAGGCTGCTCCCCCCGTGGCCCCTGCACCAGCAGCTCCTACACCGGCGGCCCCTGCACCAGCCCCCTCCTGGCCCCTGTCATCTTCTGTCCCTTCCCAGAAAACCTACCAGGGCAGCTACGGTTTCCGTCTGGGCTTCTTGCATTCTGGGACAGCCAAGTCTGTGACTTGCACGTACTCCCCTGCCCTCAACAAGATGTTTTGCCAACTGGCCAAGACCTGCCCTGTGCAGCTGTGGGTTGATTCCACACCCCCGTCCGGCACCCGCGTCCGCGCCATGGCCATCTACAAGCAGTCACAGCACATGACGGAGGTTGTGAGGCGCTGCCCCCACCATGAGCGCTGCTCAGATAGCGATGGTCTGGCCCCTCCTCAGCATCTTATCCGAGTGGAAGGAAATTTGCGTGTGGAGTATTTGGATGACAGAAACACTTTTCGACATAGTGTGGTGGTGCCCTATGAGCCGCCTGAGGTTGGCTCTGACTGTACCACCATCCACTACAACTACATGTGTAACAGTTCCTGCATGGGCGGCATGAACCGGAGGCCCATCCTCACCATCATCACACTGGAAGACTCCAGTGGTAATCTACTGGGACGGAACAGCTTTGAGGTGCGTGTTTGTGCCTGTCCTGGGAGAGACCGGCGCACAGAGGAAGAGAATCTCCGCAAGAAAGGGGAGCCTCACCACGAGCTGCCGCCAGGGAGCACTAAGCGAGCACTGCCCAACAACACCAGCTCCTCTCCCCAGCCAAAGAAGAAACCACTGGATGGAGAATATTTCACCCTTCAGATCCGTGGGCGTGAGCGCTTCGAGATGTTCCGAGAGCTGAATGAGGCCTTGGAACTCAAGGATGCCCAGGCTGGGAAGGAGCCAGGGGGGAGCAGGGCTCACTCCAGCCACCTGAAGTCCAAAAAGGGTCAGTCTACCTCCCGCCATAAAAAACTCATGTTCAAGACAGAAGGGCCTGACTCAGACTGA
(D) ATGGAGGAGCCGCAGTCAGATCCTAGCGTCGAGCCGCCTCTGAGTCAGGAAACATTTTCAGACCTATGGAAACTACTTCCTGAAAACAACGTTCTGTCCCCGTTGCCGTCCCAAGCAATGGATGATTTGATGCTGTCCCCGGACGATATTGAACAATGGTTCACTGAAGACCCAGGTCCAGATGAAGCTCCCCGCATGCCAGAGGCTGCTCCCCCCGTGGCCCCTGCACCAGCAGCTCCTACACCGGCGGCCCCTGCACCAGCCCCCTCCTGGCCCCTGTCATCTTCTGTCCCTTCCCAGAAAACCTACCAGGGCAGCTACGGTTTCCGTCTGGGCTTCTTGCATTCTGGGACAGCCAAGTCTGTGACTTGCACGTACTCCCCTGCCCTCAACAAGATGTTTTGCCAACTGGCCAAGACCTGCCCTGTGCAGCTGTGGGTTGATTCCACACCCCCGCCCGGCACCCGCGTCCGCGCCATGGCCATCTACAAGCAGTCACAGCACATGACGGAGGTTGTGAGGCGCTGCCCCCACCATGAGCGCTGCTCAGATAGCGATGGTCTGGCCCCTCCTCAGCATCTTATCCGCGTGGAAGGAAATTTGCGTGTGGAGTATTTGGATGACAGAAACACTTTTCGACATAGTGTGGTGGTGCCCTATGAGCCGCCTGAGGTTGGCTCTGACTGTACCACCATCCACTACAACTACATGTGTAACAGTTCCTGCATGGGCGGCATGAACCGGAGGCCCATCCTCACCATCATCACACTGGAAGACTCCAGTGGTAATCTACTGGGACGGAACAGCTTTGAGGTGCGTGTTTGTGCCTGTCCTGGGCGCGACCGGCGCACAGAGGAAGAGAATCTCCGCAAGAAAGGGGAGCCTCACCACGAGCTGCCGCCAGGGAGCACTAAGCGAGCACTGCCCAACAACACCAGCTCCTCTCCCCAGCCAAAGAAGAAACCACTGGATGGAGAATATTTCACCCTTCAGATCCGTGGGCGTGAGCGCTTCGAGATGTTCCGAGAGCTGAATGAGGCCTTGGAACTCAAGGATGCCCAGGCTGGGAAGGAGCCAGGGGGGAGCAGGGCTCACTCCAGCCACCTGAAGTCCAAAAAGGGTCAGTCTACCTCCCGCCATAAAAAACTCATGTTCAAGACAGAAGGGCCTGACTCAGACTGA


Eine Gruppe von Astronomen verwendet mehrwellige und räumlich aufgelöste Daten, um die Position des supermassiven Schwarzen Lochs (SMBH) in der zirkumnuklearen Region einer nahegelegenen Galaxie zu bestimmen. Sie haben die folgenden Ergebnisse erzielt: Das galaktische optische Oberflächenhelligkeitsprofil wird gut durch eine Sérsic-Komponente mit einem Sérsic-Index (n) von 4 angepasst. Sie finden stark emittierenden ionisierten und molekularen Wasserstoff in den Spektren der gesamten zirkumnuklearen Region und insbesondere einen Bereich in Richtung Nordosten, in dem die Linienprofile ionisierten Wasserstoffs eine breite Komponente (1000 km/s) aufweisen, die im Vergleich zur schmalen Komponente derselben Linie blauverschoben ist. Zusätzlich fanden sie in südöstlicher Richtung einen Bereich mit ungelöster Emission der verbotenen Koronalinie [NeV]. Welche der Regionen beherbergt am wahrscheinlichsten das supermassive Schwarze Loch?
(A) In der Region, in der ionisierter und molekularer Wasserstoff stark emittiert.
(B) In der Region, in der ionisierter Wasserstoff eine blauverschobene breite Komponente aufweist.
(C) Am Emissionsgipfel der Sérsic-Komponente.
(D) In dem Bereich, in dem die Emission der Koronalinie nachgewiesen wird.

Eine Gruppe von Astronomen verwendet Multiwellenlängen- und ortsaufgelöste Daten, um die Position des Supermassereichen Schwarzen Lochs (SMBH) in der zirkumnuklearen Region einer nahegelegenen Galaxie zu bestimmen. Dabei kamen sie zu folgenden Ergebnissen: Das galaktische optische Oberflächenhelligkeitsprofil passt gut zu a Sérsic-Komponente mit einem Sérsic-Index (n) gleich 4. Sie finden stark emittierenden ionisierten und molekularen Wasserstoff in den Spektren der gesamten zirkumnuklearen Region und insbesondere finden sie eine Region im Nordosten, wo die Linienprofile des ionisierten Wasserstoffs eine breite Komponente aufweisen (1000). km/s), die gegenüber der schmalen Komponente derselben Linie blauverschoben ist. Darüber hinaus fanden sie in südöstlicher Richtung eine Region mit ungelöster Emission der verbotenen Koronallinie [NeV]. Welche der Regionen beherbergt am wahrscheinlichsten das supermassereiche Schwarze Loch?
(A) In der Region, in der der ionisierte und molekulare Wasserstoff stark emittiert.
(B) In der Region, in der der ionisierte Wasserstoff eine blauverschobene breite Komponente aufweist.
(C) Auf dem Höhepunkt der Emission der Sérsic-Komponente.
(D) In der Region, in der die Emission der Koronallinie erfasst wird.

Eine Gruppe von Astronomen verwendet Multiwellenlängen und räumlich aufgelöste Daten, um die Position des supermassiven Schwarzen Lochs (SMBH) in der Umrundkernregion einer nahe gelegenen Galaxie zu bestimmen. Sie haben die folgenden Ergebnisse erzielt: Das galaktische optische Oberflächen-Helligkeitsprofil wird gut durch eine Sérsic-Komponente mit einem Sérsic-Index (n) von 4 angepasst. Sie finden stark emittierenden ionisierten und molekularen Wasserstoff in den Spektren des gesamten Umrundkernbereichs und finden insbesondere eine Region In nordöstlicher Richtung, in der die ionisierten Wasserstofflinienprofile eine breite Komponente aufweisen (1000 km/s), der in Bezug auf die schmale Komponente derselben Linie blau verschoben wird. Zusätzlich fanden sie durch die südöstliche Richtung eine Region mit ungelöster Emission der verbotenen koronalen Linie [NeV]. Welcher der Regionen ist am wahrscheinlichsten, um das supermassive Schwarze Loch zu beherbergen?
(A) In der Region, in der der ionisierte und molekulare Wasserstoff stark emittiert.
(B) In der Region, in der der ionisierte Wasserstoff eine blau verschobene breite Komponente aufweist.
(C) am Emissionsmaximum der Sérsic-Komponente.
(D) In der Region, in der die koronale Linie Emission erkannt wird.


Identifizieren Sie Verbindung E im folgenden Reaktionsschema.
Verbindung A erzeugt bei Reaktion mit HCN Verbindung B.
Verbindung B bildet bei Reduktion mit H2 in Gegenwart von Pd Verbindung C.
Verbindung C bildet bei Reaktion mit HNO2 Verbindung D.
Verbindung D bildet unter Eliminierung eines Inertgases Verbindung E.
Hinweise:
a) Verbindung A bildet bei Reaktion mit einem unbekannten Phosphorylid 1,2-Dimethyl-4-(propan-2-yliden)cyclopentan.
b) Das IR-Spektrum von Verbindung A weist einen starken Peak bei etwa 1750 cm^-1 auf, während das IR-Spektrum von Verbindung E einen starken Peak bei etwa 1715 cm^-1 aufweist.
(A) 2,3,4-Trimethylcyclopentan-1-on
(B) 2,2,3,4-Tetramethylcyclobutan-1-on
(C) 4-Methylcycloheptan-1-on
(D) 3,4-Dimethylcyclohexan-1-on

Identifizieren Sie Verbindung E im folgenden Reaktionsschema.
Verbindung A erzeugt bei Reaktion mit HCN Verbindung B.
Verbindung B bildet bei Reduktion mit H2 in Gegenwart von Pd Verbindung C.
Verbindung C bildet bei Reaktion mit HNO2 Verbindung D.
Verbindung D bildet bei Eliminierung eines Inertgases Verbindung E.
Hinweise:
a) Verbindung A bildet bei Reaktion mit einem unbekannten Phosphorylid 1,2-Dimethyl-4-(Propan-2-yliden)cyclopentan.
b) Das IR-Spektrum von Verbindung A weist einen starken Peak bei etwa 1750 cm^-1 auf, während das IR-Spektrum von Verbindung E einen starken Peak bei etwa 1715 cm^-1 aufweist.
(A) 2,3,4-Trimethylcyclopentan-1-on
(B) 2,2,3,4-Tetramethylcyclobutan-1-on
(C) 4-Methylcycloheptan-1-on
(D) 3,4-Dimethylcyclohexan-1-on


Große Wolken aus neutralem Wasserstoff im Weltraum absorbieren das Licht von Hintergrundquasaren bei der Lyman-Alpha-Wellenlänge von ~1216 Angström. Schätzen Sie die untere Grenze der Rotverschiebung dieser Objekte, sodass sie mit optischen erdgebundenen Teleskopen erkannt werden können?
(A) 1,2
(B) 2,4
(C) 3
(D) 1,9

Große Wolken neutralen Wasserstoffs im tiefen Raum absorbieren das Licht von Hintergrundquasaren bei der Lyman-Alpha-Wellenlänge ~ 1216 Angstrom. Schätzen Sie die untere Grenze für die Rotverschiebung dieser Objekte so, dass sie mit optischen bodengestützten Teleskopen erkannt werden können?
(A) 1.2
(B) 2.4
(C) 3
(D) 1.9


Welche der folgenden Sequenzen ist korrekt nach ihrem Alter geordnet? Gehen Sie davon aus, dass alle standardmäßigen und nicht standardmäßigen physikalischen Prozesse (wie Rotationsgeschichte, Mischungsprozesse und Anfangsbedingungen) für alle Sterne gleich sind. Die Sterne sind einzeln und nicht Teil eines Mehrsternsystems.

a) RGB-Stern mit [Fe/H] = 0 dex und M = 5 Msun
b) Stern mit Teff = 5700 K, [Fe/H] = 0 dex, logg = 4,2 dex und M = 1 Msun
c) RGB-Stern mit [Fe/H] = 0 dex und M = 1 Msun
d) Stern mit Teff = 5760 K, [Fe/H] = 0 dex, logg = 4,45 dex und M = 1 Msun
e) AGB-Stern mit [Fe/H] = 0 dex und M = 1 Msun
(A) a < b < e < c
(B) b < d < c < e
(C) c < d < b < e
(D) a < d < b < e

Welche der folgenden Sequenzen ist korrekt nach ihrem Alter geordnet? Nehmen Sie an, dass alle standardmäßigen und nicht standardmäßigen physikalischen Prozesse (wie Rotationsgeschichte, Mischungsprozesse und Anfangsbedingungen) für alle Sterne gleich sind. Die Sterne sind einzeln und nicht Teil eines mehrstelligen Systems.

a) RGB-Stern mit [Fe/H] = 0 dex und M = 5 Msun
b) Stern mit Teff = 5700 K, [Fe/H] = 0 dex, logg = 4,2 dex und M = 1 Msun
c) RGB-Stern mit [Fe/H] = 0 dex und M = 1 Msun
d) Stern mit Teff = 5760 K, [Fe/H] = 0 dex, logg = 4,45 dex und M = 1 Msun
e) AGB-Stern mit [Fe/H] = 0 dex und M = 1 Msun
(A) a < b < e < c
(B) b < d < c < e
(C) c < d < b < e
(D) a < d < b < e

Welche der folgenden Sequenzen ist nach ihrem Alter richtig geordnet? Gehen Sie davon aus, dass alle standardmäßigen und nicht standardmäßigen physikalischen Prozesse (wie Rotationsgeschichte, Mischungsprozesse und Anfangsbedingungen) für alle Sterne gleich sind. Die Sterne sind einzeln und nicht Teil eines Mehrsternsystems.

a) RGB-Stern mit [Fe/H] = 0 dex und M = 5 Msun
b) Stern mit Teff = 5700 K, [Fe/H] = 0 dex, logg = 4,2 dex und M = 1 Msun
c) RGB-Stern mit [Fe/H] = 0 dex und M = 1 Msun
d) Stern mit Teff = 5760 K, [Fe/H] = 0 dex, logg = 4,45 dex und M = 1 Msun
e) AGB-Stern mit [Fe/H] = 0 dex und M = 1 Msun
(A) a < b < e < c
(B) b < d < c < e
(C) c < d < b < e
(D) a < d < b < e


Eine Dicarbonsäure, die ein cis-Alken enthält, wurde zum entsprechenden Anhydrid dehydratisiert. Dieses Anhydrid, das in seinem 1H-NMR-Spektrum einen einzelnen Peak (7 ppm) und in seinem 13C-Spektrum zwei Peaks (137 ppm, 165 ppm) aufweist, wurde mit 1,2,3,4-Tetramethyl-1,3-cyclopentadien umgesetzt um zwei Produkte zu erhalten (ein Haupt- und ein Nebenprodukt). Beide Produkte haben die Summenformel C13H16O3.

Es wurden die 2D-NOESY-NMR-Spektren der Haupt- und Nebenprodukte aufgenommen. Im Spektrum des Hauptprodukts war ein Kreuzpeak vorhanden, im Spektrum des Nebenprodukts fehlte dieser jedoch (oder war sehr schwach).

Welche beiden Resonanzen sind im Spektrum des Hauptprodukts durch diesen Kreuzpeak verbunden (Integrale stammen aus dem entsprechenden 1H-NMR)?
(A) Ein 6H-Singulett bei ~1,7 ppm und ein 2H-Singulett bei ~3,5 ppm
(B) Ein 6H-Singulett bei ~1 ppm und ein 6H-Singulett bei ~1,7 ppm
(C) Ein 6H-Singulett bei ~1 ppm und ein 1H-Dublett bei ~1,5 ppm
(D) Ein 1H-Dublett bei ~1,5 ppm und ein 2H-Singulett bei ~3,5 ppm

Eine Dicarbonsäure, die ein cis-Alken enthält, wurde zum entsprechenden Anhydrid dehydratisiert. Dieses Anhydrid, das in seinem 1H-NMR-Spektrum einen einzelnen Peak (7 ppm) und in seinem 13C-Spektrum zwei Peaks (137 ppm, 165 ppm) aufweist, wurde mit 1,2,3,4-Tetramethyl-1,3-cyclopentadien umgesetzt, um zwei Produkte (ein Haupt- und ein Nebenprodukt) zu ergeben. Beide Produkte haben die Molekülformel C13H16O3.

Die 2D-NOESY-NMR-Spektren der Haupt- und Nebenprodukte wurden aufgenommen. Im Spektrum des Hauptprodukts war ein Kreuzpeak vorhanden, im Spektrum des Nebenprodukts jedoch nicht vorhanden (oder sehr schwach ausgeprägt).

Welche beiden Resonanzen sind im Spektrum des Hauptprodukts durch diesen Kreuzpeak verbunden (Integrale werden aus dem entsprechenden 1H-NMR entnommen)?
(A) Ein 6H-Singulett bei ~1,7 ppm und ein 2H-Singulett bei ~3,5 ppm
(B) Ein 6H-Singulett bei ~1 ppm und ein 6H-Singulett bei ~1,7 ppm
(C) Ein 6H-Singulett bei ~1 ppm und ein 1H-Dublett bei ~1,5 ppm
(D) Ein 1H-Dublett bei ~1,5 ppm und ein 2H-Singulett bei ~3,5 ppm


Während einer Quantenkommunikationsaufgabe eines Quantendialogs für einen zweimodigen verschränkten, gequetschten kontinuierlichen variablen Zustand unter einem rauschfreien Quantenkanal, sodass die beiden erzeugten Modi unter der Bedingung r-> inf für den Quetschoperator S(r) maximal korreliert sind. Was wäre das Ergebnis der Bell-Basismessung nach der Durchführung einer Homodynerkennung, wenn Alice denselben Wert wie Bob (Alpha) in beiden Quadraturen x und p unter Verwendung eines Verschiebungsoperators D(Alpha) kodiert? (Hier ist Alpha = x1 + i p1)"
(A) (2*x1, 2*p1)
(B) (2*x1, 0)
(C) (0,0)
(D) (0,2*p1)

Während einer Quantenkommunikationsaufgabe eines Quantendialogs für einen verschränkten kontinuierlichen variablen Zustand mit zwei Moden unter einem rauschfreien Quantenkanal, so dass die beiden erzeugten Moden unter der Bedingung r-> inf für den Quetschungsoperator S(r) maximal korreliert sind. Was wäre das Ergebnis der Bell-Basismessung nach einer Homodyn-Detektion, wenn Alice denselben Wert wie Bob (alpha) in beiden Quadraturen x und p mit einem Verschiebungsoperator D(alpha) kodiert? (hier alpha = x1 + i p1)“
(A) (2*x1, 2*p1)
(B) (2*x1, 0)
(C) (0,0)
(D) (0,2*p1)


Ein Chemiker synthetisiert ein RNA-Nukleosid-Phoshoramidit aus einem β-D-Ribonukleosid.

Zuerst installieren sie die DMTr-Schutzgruppe am 5'-OH. Als nächstes behandeln sie das 5’-ODMTr-Ribonukleosid mit 1,1 Äquivalenten TBDMSCl; Es entstehen zwei Produkte (Produkte 1 und 2). Sie isolieren die beiden Produkte und nehmen von jedem das 2D-COSY-NMR-Spektrum auf.

Wichtige Merkmale des COSY-Spektrums von Produkt 1 sind:
*Eine Korrelation zwischen einem 1H-Dublett bei ca. 6 ppm (Ha) und ein 1H-Dublett von Dubletts bei ca. 4,5 ppm (Hb)
*Eine Korrelation zwischen Hb und einem breiten Singulett bei ca. 5,5 ppm
*Eine Korrelation zwischen Hb und einem weiteren 1H-Dublett von Dubletts bei ca. 4,5 ppm (Hc)

Sie verwerfen Produkt 2 und führen Produkt 1 zum endgültigen Nukleosidphosphoramidit, indem sie es mit 2-Cyanoethyl-N,N-diisopropylchlorphosphoramidit behandeln. Anschließend verwenden sie dieses Phosphoramidit, um mithilfe der Standard-Festphasenmethode ein RNA-Oligo zu synthetisieren.

Welche Beziehung besteht, wenn sie ihr synthetisches RNA-Oligo mit einem natürlich vorkommenden RNA-Oligo mit genau den gleichen Basentypen und der gleichen Basensequenz vergleichen?
(A) Diastereoisomere
(B) Identisch
(C) Konstitutionsisomere, aber keine Regioisomere
(D) Regioisomere

Ein Chemiker synthetisiert ein RNA-Nukleosid-Phosphoramidit aus einem β-D-Ribonukleosid.

Zuerst installieren sie die DMTr-Schutzgruppe am 5'-OH. Als nächstes behandeln sie das 5'-ODMTr-Ribonukleosid mit 1,1 Äquiv. TBDMSCl; es entstehen zwei Produkte (Produkte 1 und 2). Sie isolieren die beiden Produkte und nehmen von jedem das 2D-COSY-NMR-Spektrum auf.

Wichtige Merkmale des COSY-Spektrums von Produkt 1 sind:

*Eine Korrelation zwischen einem 1H-Dublett bei ca. 6 ppm (Ha) und einem 1H-Dublett von Dubletts bei ca. 4,5 ppm (Hb)

*Eine Korrelation zwischen Hb und einem breiten Singulett bei ca. 5,5 ppm

*Eine Korrelation zwischen Hb und einem weiteren 1H-Dublett von Dubletts bei ca. 4,5 ppm (Hc)

Sie verwerfen Produkt 2 und führen Produkt 1 durch Behandlung mit 2-Cyanoethyl-N,N-Diisopropylchlorphosphoramidit zum endgültigen Nukleosidphosphoramidit. Anschließend verwenden sie dieses Phosphoramidit, um mithilfe der Standard-Festphasenmethode ein RNA-Oligo zu synthetisieren.

Wenn sie ihr synthetisches RNA-Oligo mit einem natürlich vorkommenden RNA-Oligo mit genau denselben Typen und Basensequenzen vergleichen, wie ist dann die Beziehung?
(A) Diastereoisomere
(B) Identische
(C) Konstitutionsisomere, aber keine Regioisomere
(D) Regioisomere


Die Bromierung von Alkenen ist eine stereospezifische Reaktion. 2-Methoxybut-2-en wird jedoch in Tetrachlorkohlenstoff zu einem Gemisch aus cis- und trans-Dihalogeniden bromiert. Erläutern Sie das Konzept hinter dieser Beobachtung.
(A) Unsymmetrische Alkene bilden immer ein Gemisch von Enantiomeren.
(B) Der Übergangszustand entspricht einem konzertierten Mechanismus, bei dem ein Bromonium-Ion als Zwischenprodukt entsteht.
(C) Der Übergangszustand stimmt mit einem zyklischen Zwischenprodukt überein, das zu einem racemischen Produktgemisch führt.
(D) Es handelt sich um einen schrittweisen Mechanismus, der zu einem stabilen Carbokation-Zwischenprodukt führt.

Die Bromierung von Alkenen ist eine stereospezifische Reaktion. 2-Methoxybut-2-en wird jedoch in Tetrachlorkohlenstoff bromiert und bildet ein Gemisch aus cis- und trans-Dihalogeniden. Begründen Sie das Konzept hinter dieser Beobachtung.
(A) Unsymmetrische Alkene bilden immer ein Gemisch aus Enantiomeren.
(B) Der Übergangszustand entspricht einem konzertierten Mechanismus, der ein Bromoniumion als Zwischenprodukt erzeugt.
(C) Der Übergangszustand entspricht einem zyklischen Zwischenprodukt, das zu einem racemischen Produktgemisch führt.
(D) Es handelt sich um einen schrittweisen Mechanismus, der zu einem stabilen Carbokation-Zwischenprodukt führt.

Die Bromierung von Alkenen ist eine stereospezifische Reaktion. 2-Methoxybut-2-en wird jedoch in Tetrachlorkohlenstoff bromiert und bildet ein Gemisch aus cis- und trans-Dihalogeniden. Begründen Sie das Konzept hinter dieser Beobachtung.
(A) Unsymmetrische Alkene bilden immer ein Gemisch aus Enantiomeren.
(B) Der Übergangszustand entspricht einem konzertierten Mechanismus, der ein Bromoniumion-Zwischenprodukt erzeugt.
(C) Der Übergangszustand entspricht einem zyklischen Zwischenprodukt, das zu einem racemischen Produktgemisch führt.
(D) Es handelt sich um einen schrittweisen Mechanismus, der zu einem stabilen Carbokation-Zwischenprodukt führt.


Stellen Sie sich einen ungeladenen sphärischen Leiter mit Radius $R$ vor, der im Inneren einen kleinen sphärischen Hohlraum hat. Der Mittelpunkt des Hohlraums ist durch einen Abstand $s$ vom Mittelpunkt des sphärischen Leiters getrennt. Der Radius des Hohlraums ist $r$ und $r<R$. Nehmen wir nun an, dass eine kleine Menge positiver Ladung $+q$ irgendwie irgendwo im Hohlraum platziert ist. Wie groß ist die Stärke des elektrischen Felds $\vec{E}$ an einem Punkt P (außerhalb des sphärischen Leiters) mit Abstand $L$ vom Mittelpunkt des sphärischen Leiters? Beachten Sie, dass der Abstand des Punkts P vom Mittelpunkt des Hohlraums $l$ beträgt. Hier ist l, L > R. Der Winkel zwischen $l$ und $s$ ist $\theta$
(A) $E = \dfrac{1}{4 \pi \epsilon_o} \dfrac{q}{l^2}$
(B) $E = \dfrac{1}{4 \pi \epsilon_o} \dfrac{q}{(l+s \cos\theta)^2}$
(C) $E = \dfrac{1}{4 \pi \epsilon_o} \dfrac{q}{(l-s \cos\theta)^2}$
(D) $E = \dfrac{1}{4 \pi \epsilon_o} \dfrac{q}{L^2}$


Das 1H-NMR-Spektrum einer Lösung, die eine 1:1-Mischung aus zwei aromatischen Verbindungen mit der Molekülformel C10H14 enthält, weist zwei Signale (zwei Singuletts) bei etwa 6,7 ppm im Verhältnis 1:1 auf. Außerdem gibt es drei Signale bei etwa 2,2 ppm (alle Singuletts) im Verhältnis 2:1:1. Welche zwei Verbindungen sind in der Mischung vorhanden? Aus den folgenden Optionen können Sie wählen: 1,2,4,5-Tetramethylbenzol, 1,2,3,5-Tetramethylbenzol, 1,2,3,4-Tetramethylbenzol und 1,4-Diethylbenzol.
(A) 1,2,4,5-Tetramethylbenzol und 1,2,3,5-Tetramethylbenzol
(B) 1,2,3,4-Tetramethylbenzol und 1,2,3,5-Tetramethylbenzol
(C) 1,2,3,5-Tetramethylbenzol und 1,4-Diethylbenzol
(D) 1,2,4,5-Tetramethylbenzol und 1,2,3,4-Tetramethylbenzol

Das 1H-NMR-Spektrum einer Lösung, die eine 1:1-Mischung aus zwei aromatischen Verbindungen mit der Molekülformel C10H14 enthält, weist zwei Signale (zwei Singuletts) bei etwa 6,7 ppm im Verhältnis 1:1 auf. Außerdem gibt es drei Signale bei etwa 2,2 ppm (alle Singuletts) im Verhältnis 2:1:1. Welche zwei Verbindungen sind in der Mischung vorhanden? Aus den folgenden Optionen können Sie wählen: 1,2,4,5-Tetramethylbenzol, 1,2,3,5-Tetramethylbenzol, 1,2,3,4-Tetramethylbenzol und 1,4-Diethylbenzol.
(A) 1,2,4,5-tetramethylbenzol und 1,2,3,5-tetramethylbenzol
(B) 1,2,3,4-tetramethylbenzol und 1,2,3,5-tetramethylbenzol
(C) 1,2,3,5-tetramethylbenzol und 1,4-diethylbenzol
(D) 1,2,4,5-tetramethylbenzol und 1,2,3,4-tetramethylbenzol


Wir haben eine Lösung mit einem Volumen von 200,00 cm3, die 1,00 g KH2PO4 (Mw = 136,09 g/mol) und 1,00 g Na2HPO4●2H2O (Mw = 177,99 g/mol) enthält (T = 25 °C). Wie hoch ist die Konzentration an Orthophosphat-Ionen in dieser Lösung? Die Ka1-, Ka2- und Ka3-Werte für H3PO4 betragen 7,5x10^-3, 6,2x10^-8 bzw. 1,8x10^-12.
(A) 5,48x10^-7 M
(B) 2,81x10^-7 M
(C) 3,97x10^-7 M
(D) 6,24x10^-7 M

Wir haben eine Lösung mit einem Volumen von 200,00 cm3, die 1,00 g KH2PO4 (Mw = 136,09 g/mol) und 1,00 g Na2HPO4●2H2O (Mw = 177,99 g/mol) enthält (T = 25 °C). Wie hoch ist die Konzentration der Orthophosphationen in dieser Lösung? Die Ka1-, Ka2- und Ka3-Werte für H3PO4 betragen 7,5x10^-3, 6,2x10^-8 bzw. 1,8x10^-12.
(A) 5,48x10^-7 M
(B) 2,81x10^-7 M
(C) 3,97x10^-7 M
(D) 6,24x10^-7 M


Der Oxidationszustand eines Kohlenstoffatoms in einem organischen Molekül variiert je nach Anzahl und Art der direkt gebundenen Substituenten. Abhängig vom Oxidationszustand des Kohlenstoffatoms nehmen verschiedene funktionelle Gruppen organischer Verbindungen in der folgenden Reihenfolge zu:
Alkan<ether<keton<ester
Vervollständigen Sie die folgende Reaktion (Zwischenprodukt (A) und Reaktionstyp (B).
4-Oxo-2,4-diphenylbutannitril (Reduktion) ---> A (B) --->3,5-Diphenyl-2,3-dihydro-1H-pyrrol
(A) A = 4-Amino-1,3-diphenylbutan-1-ol, B = Oxidation
(B) A = 4-Amino-1,3-diphenylbutan-1-on, B = Oxidation
(C) A = 4-Amino-1,3-diphenylbutan-1-ol, B = Reduktion
(D) A = 4-Amino-1,3-diphenylbutan-1-on, B = Transformation

Der Oxidationsgrad eines Kohlenstoffatoms in einem organischen Molekül variiert je nach Anzahl und Art der direkt gebundenen Substituenten. Abhängig vom Oxidationsgrad des Kohlenstoffatoms nehmen die verschiedenen funktionellen Gruppen organischer Verbindungen in der folgenden Reihenfolge zu:
Alkan<Ether<Keton<Ester
Führen Sie die folgende Reaktion durch (Zwischenprodukt (A) und Reaktionstyp (B).
4-Oxo-2,4-diphenylbutannitril (Reduktion) ---> A (B) --->3,5-Diphenyl-2,3-dihydro-1H-pyrrol
(A) A = 4-Amino-1,3-diphenylbutan-1-ol, B = Oxidation
(B) A = 4-Amino-1,3-diphenylbutan-1-on, B = Oxidation
(C) A = 4-Amino-1,3-diphenylbutan-1-ol, B = Reduktion
(D) A = 4-Amino-1,3-diphenylbutan-1-on, B = Transformation


Ein Gen, das ein Pigment kodiert, wurde in Candida albicans, Schizosaccharomyces pombe und Clavispora lusitaniae eingeführt. Bei allen dreien bildeten sich auf dem Medium farbige Kolonien. Doch nach einigen Passagen bildete S. pombe einige farblose Kolonien. Bei der Sequenzierung und Analyse des gesamten Genoms wurde festgestellt, dass ein chromosomaler Translokationsvorgang das eingeführte Gen in diesen mutierten Kolonien an eine neue Stelle im Genom verschoben hat. Was ist die wahrscheinliche neue Stelle des Gens?
(A) In der Nähe des Zentromers
(B) In der Nähe des Telomers
(C) Weder in der Nähe des Zentromers noch des Telomers
(D) In der Nähe des Zentromers oder des Telomers


Identifizieren Sie das Ausgangsmaterial (A) und das Endprodukt (B) in den folgenden Reaktionen:
Styrol + A (Grubbs-Katalysator) ---> (E)-(3-Methylbut-1-en-1-yl)benzol
3-(Allyloxy)prop-1-en (Grubbs-Katalysator) ---> B
(A) A = 3-Methylbut-1-en, B = Tetrahydro-2H-pyran
(B) A = 1-Brom-3-methylbutan, B = Tetrahydro-2H-pyran
(C) A = 1-Brom-3-methylbutan, B = 2,5-Dihydrofuran
(D) A = 3-Methylbut-1-en, B = 2,5-Dihydrofuran

Identifizieren Sie das Ausgangsmaterial (A) und das Endprodukt (B) in den folgenden Reaktionen:
Styrol + A (Grubbs-Katalysator)---> (E)-(3-Methylbut-1-en-1-yl)benzol
3-(Allyloxy)prop-1-en (Grubbs-Katalysator) ---> B
(A) A = 3-Methylbut-1-en, B = Tetrahydro-2H-pyran
(B) A = 1-Brom-3-methylbutan, B = Tetrahydro-2H-pyran
(C) A = 1-Brom-3-methylbutan, B = 2,5-Dihydrofuran
(D) A = 3-Methylbut-1-en, B = 2,5-Dihydrofuran


A scientist studies the evolution of four closely related bromeliad species. The scientist identifies a sequence of a specific chloroplast gene and obtains the following results:

Species 1: 5'- ATGTTTCGCTGGTACTCTGTGGATGAACATGATTTTTTCTCGT...TGA-3'
Species  2: 5'- ATGTTCTCGCTGGTACTTCTGTGGATAGAACATATTTATTGTCGTA...TGA-3'
Species  3: 5'-ATGTTTCTCGCTGGTACTTCTGTGGATGAACATATTTATTGTCGT...TGA-3'
Species 4: 5'- ATGTTTCTCGCTGGTACTCTGTGGATGAACATGATTTATTCTCGT...TGA-3'

Based on this sequence, what would be the most likely evolutionary relationship of these species?
(A) Species 4 -> Species 1 -> Species 3; Species 4 -> Species 2
(B) Species 1 -> Species 2 -> Species 3; Species 1 -> Species 4
(C) Species 2 -> Species 1 -> Species 3; Species 2 -> Species 3
(D) Species 3 -> Species 4 -> Species 1; Species 3 -> Species 2

Ein Wissenschaftler untersucht die Evolution von vier eng verwandten Bromelienarten. Der Wissenschaftler identifiziert eine Sequenz eines bestimmten Chloroplastengens und erhält folgende Ergebnisse:

Art 1: 5’- ATGTTTCGCTGGTACTCTGTGGATGAACATGATTTTTTCTCGT…TGA-3’
Art 2: 5’- ATGTTCTCGCTGGTACTTCTGTGGATAGAACATATTTATTGTCGTA…TGA-3’
Art 3: 5’-ATGTTTCTCGCTGGTACTTCTGTGGATGAACATATTTATTGTCGT…TGA-3’
Art 4: 5’- ATGTTTCTCGCTGGTACTCTGTGGATGAACATGATTTATTCTCGT…TGA-3’

Was wäre basierend auf dieser Sequenz die wahrscheinlichste evolutionäre Beziehung dieser Arten?
(A) Art 4 -> Art 1 -> Art 3; Art 4 -> Art 2
(B) Art 1 -> Art 2 -> Art 3; Art 1 -> Art 4
(C) Art 2 -> Art 1 -> Art 3; Art 2 -> Art 3
(D) Art 3 -> Art 4 -> Art 1; Art 3 -> Art 2


Stellen Sie sich ein Quantenfeld vor, das sich in eine geschlossene, raumähnliche Extradimension mit dem Radius R erstreckt. Welches Muster der Teilchenmassen ist zu erwarten und wie hängen sie von R ab?
(A) Turm aus linear verteilten Massen, proportional zu R
(B) Turm aus quadratisch verteilten Massen, proportional zu 1/R
(C) Turm aus quadratisch verteilten Massen, proportional zu R
(D) Turm aus linear verteilten Massen, proportional zu 1/R

Betrachten Sie ein Quantenfeld, das sich in eine geschlossene, raumartige Extradimension mit Radius R erstreckt. Welches Muster der Teilchenmassen wird erwartet und wie hängen sie von R ab?
(A) Turm aus linear verteilten Massen, proportional zu R
(B) Turm aus quadratisch verteilten Massen, proportional zu 1/R
(C) Turm aus quadratisch verteilten Massen, proportional zu R
(D) Turm aus linear verteilten Massen, proportional zu 1/R

Betrachten wir ein Quantenfeld, das sich in eine geschlossene, raumähnliche Extradimension mit dem Radius R erstreckt. Welches Muster von Teilchenmassen ist zu erwarten, und wie hängen sie von R ab?
(A) Turm aus linear beabstandeten Massen, proportional zu R
(B) Turm aus quadratisch beabstandeten Massen, proportional zu 1/R
(C) Turm aus quadratisch beabstandeten Massen, proportional zu R
(D) Turm aus linear beabstandeten Massen, proportional zu 1/R